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一種篩選d-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法

文檔序號(hào):599340閱讀:488來(lái)源:國(guó)知局
專利名稱:一種篩選d-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及一種產(chǎn)D-核糖菌種的篩選方法,尤其涉及一種通過(guò)測(cè)定中間代謝產(chǎn)物篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法,屬于生物技術(shù)領(lǐng)域。
背景技術(shù)
D-核糖是一種具有醛基的五碳糖,是生物體內(nèi)核糖核酸(RNA)、脫氧核糖核酸(DNA)以及核苷酸的重要組成部分,是合成部分氨基酸、輔酶和堿基的中間產(chǎn)物,具有重要的生理功能。D-核糖產(chǎn)品主要用于合成維生素B2和生產(chǎn)食品鮮味劑,還可用來(lái)合成類固醇、前列腺素類、萜類化合物、凝乳酶抑制因子等。近年來(lái)利用D-核糖為原料合成抗病毒和抗癌藥物等核酸類藥物的研究也十分活躍。D-核糖還具有一定的醫(yī)療保健作用,具有增強(qiáng)心臟抵抗心肌局部缺血的能力,還可用于治療由于劇烈運(yùn)動(dòng)引起的肌肉酸痛和由于腺苷脫氫酶缺失引起的肌肉僵硬等病癥。
D-核糖的生產(chǎn)方法主要有三種,一是由核酸類物質(zhì)水解提取,二是以葡萄糖、阿拉伯糖等為原料化學(xué)合成,三是利用微生物發(fā)酵生產(chǎn)。比較而言微生物發(fā)酵法生產(chǎn)D-核糖生產(chǎn)效率高、工藝簡(jiǎn)便、生產(chǎn)成本低。微生物發(fā)酵法生產(chǎn)D-核糖通常采用轉(zhuǎn)酮酶缺失菌株,一般是以從土壤獲得或保藏菌株作為親株,通過(guò)誘變篩選積累D-核糖的轉(zhuǎn)酮酶缺失突變株,然后通過(guò)誘變篩選不生孢子的突變株來(lái)提高D-核糖產(chǎn)率。利用轉(zhuǎn)酮酶缺失微生物菌株發(fā)酵生產(chǎn)D-核糖的專利有US3919046(1975),US3970522(1976),US4904587(1990),US5281531(1994)。
從微生物代謝途徑分析,轉(zhuǎn)酮酶缺失菌種自身不能合成莽草酸,表現(xiàn)為莽草酸營(yíng)養(yǎng)缺陷型,所以D-核糖生產(chǎn)菌株的篩選一般采用誘變以后,以莽草酸營(yíng)養(yǎng)缺陷型為標(biāo)記篩選轉(zhuǎn)酮酶缺失菌株。具體做法為菌種通過(guò)誘變處理以后涂布完全培養(yǎng)基平板,然后挑取單菌落同時(shí)點(diǎn)種于基本培養(yǎng)基平板和添加有莽草酸的基本培養(yǎng)基平板,放置合適的培養(yǎng)條件下培養(yǎng),然后挑取在基本培養(yǎng)基沒(méi)有生長(zhǎng),在添加有莽草酸的平板有生長(zhǎng)的菌落,再通過(guò)搖瓶培養(yǎng)篩選積累D-核糖的菌株。
經(jīng)檢索,文獻(xiàn)報(bào)道進(jìn)一步提高D-核糖產(chǎn)率的方法有以下幾種1.采用傳統(tǒng)誘變方法以芽孢桿菌不生內(nèi)生孢子為依據(jù)篩選高產(chǎn)D-核糖菌株。
2.據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道D-核糖生產(chǎn)菌株一般都在發(fā)酵液中積累D-葡萄糖酸,這樣不但減少了D-核糖的收率,并給D-核糖提取帶來(lái)了一定的困難。D-葡萄糖酸是通過(guò)D-葡萄糖脫氫酶旁路合成,基于這樣一個(gè)事實(shí),Eur.Pat.0501756-A1提出并實(shí)施了一種通過(guò)基因工程技術(shù)選育高產(chǎn)D-核糖菌種的策略,即通過(guò)提高D-核糖生產(chǎn)菌株的葡萄糖酸操縱子的表達(dá)量,加快葡萄糖酸被利用并轉(zhuǎn)化為D-核糖速率。
3.采用傳統(tǒng)誘變方法通過(guò)測(cè)定發(fā)酵液中D-核糖含量篩選高產(chǎn)菌株,是目前D-核糖菌種選育過(guò)程中最常使用的方法,但這種方法工作量大,并且?guī)в忻つ啃?,另外D-核糖的分析測(cè)定方法也限制了該方法的大量使用。D-核糖是一種具有還原性的呋喃型單糖,沒(méi)有特異性的化學(xué)分析測(cè)定方法,目前使用的苔黑酚比色法是測(cè)定五碳糖的方法,專一性不強(qiáng),容易受其它五碳糖的干擾。另外該方法所用化學(xué)試劑苔黑酚穩(wěn)定性差,需要新鮮配制,并且用量較大,價(jià)格偏高,不適合做大量的菌種選育的分析。用高壓液相色譜分析,測(cè)定專一性強(qiáng),但運(yùn)行費(fèi)用昂貴,直接測(cè)定發(fā)酵液,分離柱容易受到污染,同樣不適合菌種篩選工作。
目前工業(yè)生產(chǎn)中使用的生產(chǎn)菌株絕大多數(shù)仍是通過(guò)傳統(tǒng)誘變的方法選育獲得的,通過(guò)代謝工程選育生產(chǎn)菌株仍處于研究階段。然而,在生產(chǎn)實(shí)踐中建立一套行之有效的菌株選育方法對(duì)保證生產(chǎn)的正常運(yùn)行非常必要。

發(fā)明內(nèi)容
針對(duì)現(xiàn)有技術(shù)的不足,本發(fā)明要解決的問(wèn)題是在發(fā)酵法生產(chǎn)D-核糖技術(shù)深入研究的基礎(chǔ)上提出一種篩選高產(chǎn)、高轉(zhuǎn)化率D-核糖生產(chǎn)菌種的方法。
實(shí)驗(yàn)表明本發(fā)明提供的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法,簡(jiǎn)便易行,準(zhǔn)確度高,特別適用于企業(yè)、科研對(duì)D-核糖生產(chǎn)菌株的日常選育和定期復(fù)壯。
本發(fā)明涉及的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法是基于以下原理設(shè)計(jì)的。
申請(qǐng)人研究發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)酮酶缺失D-核糖生產(chǎn)菌株在發(fā)酵過(guò)程中產(chǎn)生一種與斐林試劑發(fā)生反應(yīng)的非糖類化合物,經(jīng)色質(zhì)聯(lián)用儀分析鑒定該化合物為3-羥基丁酮。經(jīng)文獻(xiàn)檢索,文獻(xiàn)(J.Appl.Microbiol.8325-30.)曾報(bào)道D-核糖生產(chǎn)菌株ATCC21951在發(fā)酵液中也積累3-羥基丁酮,本申請(qǐng)人又進(jìn)一步對(duì)多株D-核糖生產(chǎn)菌株進(jìn)行發(fā)酵分析,發(fā)現(xiàn)并證實(shí)D-核糖生產(chǎn)菌株在發(fā)酵液中積累3-羥基丁酮具有普遍性。
通過(guò)對(duì)糖代謝途徑分析發(fā)現(xiàn)3-羥基丁酮是由丙酮酸通過(guò)2,3-丁二醇環(huán)途徑合成的。微生物一般通過(guò)兩條代謝途徑降解葡萄糖生成丙酮酸糖酵解途徑(EMP)和磷酸戊糖循環(huán)途徑(PPC)途徑。在EMP途徑中葡萄糖轉(zhuǎn)化成1,6-二磷酸果糖后,在醛縮酶的催化下,裂解成兩個(gè)3碳化合物(3-磷酸甘油醛和磷酸二羥丙酮),由此轉(zhuǎn)化成2分子丙酮酸;在PPC途徑中葡萄糖轉(zhuǎn)化生成6-磷酸葡萄糖酸后,通過(guò)戊糖磷酸循環(huán)生成3-磷酸甘油醛,3-磷酸甘油醛直接進(jìn)入EMP生成丙酮酸。D-核糖是生產(chǎn)菌株經(jīng)由PPC途徑合成的,但D-核糖生產(chǎn)菌株因?yàn)檗D(zhuǎn)酮酶缺失,PPC途徑不完整,不能合成3-磷酸甘油醛,因此D-核糖產(chǎn)生菌株發(fā)酵液中積累的3-羥基丁酮可以斷定是通過(guò)EMP途徑生成的。
在D-核糖發(fā)酵過(guò)程中EMP和PPC途徑對(duì)底物葡萄糖形成競(jìng)爭(zhēng)性消耗,從代謝調(diào)控的角度來(lái)講,如果能有效抑制EMP途徑的代謝流,減少葡萄糖通過(guò)EMP途徑的代謝量,使葡萄糖最大限度的通過(guò)PPC途徑代謝,合成D-核糖,則有利于提高葡萄糖生成D-核糖的轉(zhuǎn)化率,增加D-核糖產(chǎn)率。
理想的D-核糖生產(chǎn)代謝菌株,EMP代謝途徑缺失或越弱越好。通過(guò)上述分析可知轉(zhuǎn)酮酶缺失的D-核糖生產(chǎn)菌株副產(chǎn)物3-羥基丁酮主要通過(guò)EMP途徑合成。因此通過(guò)測(cè)定D-核糖發(fā)酵液中3-羥基丁酮的含量就可以估計(jì)D-核糖發(fā)酵菌株EMP途徑代謝流的強(qiáng)弱,以此來(lái)評(píng)價(jià)D-核糖發(fā)酵菌株轉(zhuǎn)化葡萄糖生產(chǎn)D-核糖的能力的大小。
基于上述原理,申請(qǐng)人提出了一種篩選高產(chǎn)、高轉(zhuǎn)化率D-核糖生產(chǎn)菌種方法。
本發(fā)明所述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法,其步驟是以常規(guī)方法誘變轉(zhuǎn)酮酶缺失的D-核糖生產(chǎn)菌株,涂布平板分離單菌落,挑取單菌落移接斜面,35-37℃培養(yǎng)45-55小時(shí),選成熟斜面再以35-37℃、200轉(zhuǎn)/分鐘條件進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng)55-65小時(shí),取發(fā)酵液4000-5000轉(zhuǎn)/分鐘離心10-15分鐘,然后測(cè)定離心后發(fā)酵清液中的3-羥基丁酮、還原糖及葡萄糖含量,選擇3-羥基丁酮、葡萄糖含量低、還原糖含量高的菌株再常規(guī)方法進(jìn)行復(fù)篩,即可得到D-核糖產(chǎn)率及轉(zhuǎn)化率高的菌株。
在應(yīng)用上述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法時(shí)所述3-羥基丁酮含量低,可判定D-核糖發(fā)酵菌株糖酵解途徑(EMP)代謝流弱;葡萄糖含量低說(shuō)明菌株轉(zhuǎn)化葡萄糖的能力強(qiáng)、速度快;在本發(fā)明中斐林試劑測(cè)定的D-核糖發(fā)酵液中還原糖含量是葡萄糖、D-核糖和3-羥基丁酮含量之和,因此如果發(fā)酵液中葡萄糖、3-羥基丁酮含量一定,還原糖含量越高就證明D-核糖含量越高。選擇3-羥基丁酮、葡萄糖含量越低低、還原糖含量越高的菌株轉(zhuǎn)化葡萄糖生產(chǎn)D-核糖的能力的越大,該轉(zhuǎn)酮酶缺失的D-核糖生產(chǎn)菌株越有選擇價(jià)值。
在上述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法中所述斜面培養(yǎng)條件優(yōu)選是37℃培養(yǎng)48小時(shí)。
在上述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法中所述發(fā)酵培養(yǎng)條件優(yōu)選是37℃、200轉(zhuǎn)/分鐘條件發(fā)酵培養(yǎng)60小時(shí)。
在上述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法中所述3-羥基丁酮含量的測(cè)定方法是將離心后發(fā)酵清液稀釋至可測(cè)定范圍濃度后取1ml,加蒸餾水4ml,充分混勻后再加入以蒸餾水配制的濃度為1g/L的肌酸1ml、以1mol/L NaOH配制的濃度為5g/L的α-萘酚1ml,室溫反應(yīng)50分鐘,以1cm比色池,波長(zhǎng)530nm,測(cè)定吸光度(A),根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算發(fā)酵液中3-羥基丁酮的含量。
在上述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法中所述還原糖含量的測(cè)定采用斐林試劑定糖法。
在上述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法中所述葡萄糖含量的測(cè)定采用SBA-40C型葡萄糖測(cè)定儀。
在上述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法中涉及的3-羥基丁酮的測(cè)定原理是3-羥基丁酮與肌酸和甲萘酚反應(yīng)形成粉紅色復(fù)合物,3-羥基丁酮的含量在0-100ug時(shí)該復(fù)合物的在530nm吸光度(A)與3-羥基丁酮的含量呈線性關(guān)系。該方法是經(jīng)典的測(cè)定3-羥基丁酮的方法,反應(yīng)靈敏、專一性強(qiáng)、操作簡(jiǎn)便,適合批量分析。
涉及的3-羥基丁酮標(biāo)準(zhǔn)曲線及其制作方法是配制10mg/L的標(biāo)準(zhǔn)3-羥基丁酮水溶液,取6只比色管,按次序分別加入10mg/L的標(biāo)準(zhǔn)3-羥基丁酮水溶液0ml,0.5ml,1.0ml,1.5ml,2.0ml,2.5ml,然后在上述比色管中加入蒸餾水,使總體積至5ml,再依次加入1g/L的肌酸(蒸餾水配制)1ml、5g/L的α-萘酚(1mol/L NaOH配制)1ml,室溫反應(yīng)50分鐘,以1cm比色池,波長(zhǎng)530nm,測(cè)定吸光度(A),以3-羥基丁酮的量為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
在斐林試劑定糖法實(shí)驗(yàn)中斐林試劑是常用的單糖的定量測(cè)定方法之一,測(cè)定原理是根據(jù)單糖中含有的醛基和羰基具有還原性,能和斐林試劑中的二價(jià)銅離子定量發(fā)生氧化還原。D-核糖,葡萄糖和3-羥基丁酮都可以與斐林試劑發(fā)生定量反應(yīng)。
在應(yīng)用SBA-40C型葡萄糖測(cè)定儀測(cè)定葡萄糖中測(cè)定原理是利用固定化葡萄糖脫氫酶與葡萄糖進(jìn)行專一性反應(yīng),不受其它化合物的干擾。
涉及菌種的誘變和培養(yǎng)方法是出發(fā)菌種經(jīng)常規(guī)誘變后,涂布平板分離單菌落,挑取單菌落移接斜面,待斜面菌種成熟后將1~2環(huán)活化的菌種,接種于裝有30ml種子培養(yǎng)基的250ml的三角瓶中,200轉(zhuǎn)/分鐘條件振蕩培養(yǎng)55~72小時(shí),發(fā)酵液離心去菌體,發(fā)酵清液用來(lái)測(cè)定其中的3-羥基丁酮、還原糖及葡萄糖含量,以還原糖含量高、葡萄糖和3-羥基丁酮含量低的為標(biāo)準(zhǔn),選育本發(fā)明所述的D-核糖產(chǎn)率及轉(zhuǎn)化率高的菌株。
本發(fā)明是通過(guò)測(cè)定D-核糖生產(chǎn)菌株發(fā)酵液中一種副產(chǎn)物3-羥基丁酮的含量,間接考查該菌株生產(chǎn)D-核糖的效率的,通過(guò)測(cè)定D-核糖發(fā)酵液中3-羥基丁酮的含量就可以估計(jì)D-核糖發(fā)酵菌株EMP途徑代謝流的強(qiáng)弱,以此來(lái)評(píng)價(jià)D-核糖發(fā)酵菌株轉(zhuǎn)化葡萄糖生產(chǎn)D-核糖的能力的大小,實(shí)現(xiàn)了快速、準(zhǔn)確、簡(jiǎn)便、高效的設(shè)計(jì)目的,且本發(fā)明所涉及的3-羥基丁酮、還原糖和葡萄糖的測(cè)定方法都是被普遍采用的,操作簡(jiǎn)便、重復(fù)性好、成本低,實(shí)踐證明本發(fā)明提出的生產(chǎn)D-核糖菌種的選育方法,特別適合生產(chǎn)菌種的分離篩選,一方面可以逐步提高生產(chǎn)菌種D-核糖產(chǎn)率和轉(zhuǎn)化率,另一方面可以防止菌種優(yōu)良性狀的退化和消失,在D-核糖的工業(yè)化生產(chǎn)中具有重要意義。
下面結(jié)合實(shí)施例對(duì)對(duì)本發(fā)明進(jìn)行詳細(xì)說(shuō)明,但本發(fā)明又不受實(shí)施例所局限。
具體實(shí)施例方式
實(shí)施例1采用紫外線按照常規(guī)方法對(duì)轉(zhuǎn)酮酶缺失D-核糖生產(chǎn)菌株(枯草芽孢桿菌ATCC21952)進(jìn)行誘變,然后適當(dāng)稀釋涂布平板(平板培養(yǎng)基蛋白胨10g/L,酵母浸出物1g/L,硫酸鎂2g/L,氯化鈉3g/L,瓊脂20g/L,pH 7.0-7.2),37℃培養(yǎng),待長(zhǎng)出單菌落,挑取單菌落并移接斜面(斜面培養(yǎng)基蛋白胨10g/L,酵母浸出物1g/L,硫酸鎂2g/L,氯化鈉3g/L,瓊脂20g/L,pH 7.0-7.2),共挑取單菌落移接斜面647支,斜面放置37℃培養(yǎng)48小時(shí),取成熟斜面一支對(duì)一支接種搖瓶(250ml三角瓶裝30ml發(fā)酵培養(yǎng)基葡萄糖120-150g/L,硫酸銨5g/L,玉米漿20g/L,硫酸錳0.2g/L,硫酸鎂0.4g/L,pH 6.0-7.2),37℃、200轉(zhuǎn)/分鐘搖瓶培養(yǎng)60小時(shí),發(fā)酵液4000轉(zhuǎn)/分鐘離心10分鐘,留取上清液,備用。
將離心后發(fā)酵清液稀釋至3-羥基丁酮的含量約10mg/L左右,然后取1ml,加蒸餾水4ml,充分混勻后再加入以蒸餾水配制的濃度為1g/L的肌酸1ml、以1mol/L NaOH配制的濃度為5g/L的α-萘酚1ml,室溫反應(yīng)50分鐘,以1cm比色池,波長(zhǎng)530nm,測(cè)定吸光度(A),根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算發(fā)酵液中3-羥基丁酮的含量。
上述涉及的3-羥基丁酮標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作方法是配制10mg/L的標(biāo)準(zhǔn)3-羥基丁酮水溶液,取6只比色管,按次序分別加入10mg/L的標(biāo)準(zhǔn)3-羥基丁酮水溶液0ml,0.5ml,1.0ml,1.5ml,2.0ml,2.5ml,然后在上述比色管中加入蒸餾水,使總體積至5ml,再依次加入1g/L的肌酸(蒸餾水配制)1ml、5g/L的α-萘酚(1mol/L NaOH配制)1ml,室溫反應(yīng)50分鐘,以1cm比色池,波長(zhǎng)530nm,測(cè)定吸光度(A),以3-羥基丁酮的量為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
同理,按常規(guī)實(shí)驗(yàn)室方法,以斐林試劑定糖法測(cè)定還原糖的含量;以SBA-40C型葡萄糖測(cè)定儀測(cè)定葡萄糖的含量。
選擇3-羥基丁酮、葡萄糖含量低、還原糖含量高的菌株再進(jìn)行搖瓶復(fù)篩。經(jīng)多次常規(guī)分離篩選后得到4株D-核糖產(chǎn)率和轉(zhuǎn)化率提高的菌株,其中D-核糖產(chǎn)率較現(xiàn)有菌株平均提高30%,轉(zhuǎn)化率提高11%。
實(shí)施例2采用紫外線按照常規(guī)方法對(duì)轉(zhuǎn)酮酶缺失D-核糖生產(chǎn)菌株(短小芽孢桿菌ATCC21951)進(jìn)行誘變,然后適當(dāng)稀釋涂布平板(平板培養(yǎng)基蛋白胨10g/L,酵母浸出物1g/L,硫酸鎂2g/L,氯化鈉3g/L,瓊脂20g/L,pH 7.0-7.2),37℃培養(yǎng),待長(zhǎng)出單菌落,挑取單菌落并移接斜面(斜面培養(yǎng)基蛋白胨10g/L,酵母浸出物1g/L,硫酸鎂2g/L,氯化鈉3g/L,瓊脂20g/L,pH 7.0-7.2),共挑取單菌落移接斜面476支,斜面放置,35℃培養(yǎng)55小時(shí),取成熟斜面一支對(duì)一支接種搖瓶(250ml三角瓶裝30ml發(fā)酵培養(yǎng)基葡萄糖120-150g/L,硫酸銨5g/L,玉米漿20g/L,硫酸錳0.2g/L,硫酸鎂0.4g/L,pH 6.0-7.2),35℃、200轉(zhuǎn)/分鐘搖瓶培養(yǎng)70小時(shí),發(fā)酵液5000轉(zhuǎn)/分鐘離心15分鐘,留取上清液,備用。
將離心后發(fā)酵清液稀釋至3-羥基丁酮的含量約10mg/L左右,然后取1ml,加蒸餾水4ml,充分混勻后再加入以蒸餾水配制的濃度為1g/L的肌酸1ml、以1mol/L NaOH配制的濃度為5g/L的α-萘酚1ml,室溫反應(yīng)50分鐘,以1cm比色池,波長(zhǎng)530nm,測(cè)定吸光度(A),根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算發(fā)酵液中3-羥基丁酮的含量。
上述涉及的3-羥基丁酮標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作方法是配制10mg/L的標(biāo)準(zhǔn)3-羥基丁酮水溶液,取6只比色管,按次序分別加入10mg/L的標(biāo)準(zhǔn)3-羥基丁酮水溶液0ml,0.5ml,1.0ml,1.5ml,2.0ml,2.5ml,然后在上述比色管中加入蒸餾水,使總體積至5ml,再依次加入1g/L的肌酸(蒸餾水配制)1ml、5g/L的α-萘酚(1mol/L NaOH配制)1ml,室溫反應(yīng)50分鐘,以1cm比色池,波長(zhǎng)530nm,測(cè)定吸光度(A),以3-羥基丁酮的量為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
同理,按常規(guī)實(shí)驗(yàn)室方法,以斐林試劑定糖法測(cè)定還原糖的含量;以SBA-40C型葡萄糖測(cè)定儀測(cè)定葡萄糖的含量。
選擇3-羥基丁酮、葡萄糖含量低、還原糖含量高的菌株再進(jìn)行搖瓶復(fù)篩。經(jīng)多次常規(guī)分離篩選后得到3株D-核糖產(chǎn)率和轉(zhuǎn)化率提高的菌株,其中D-核糖產(chǎn)率較現(xiàn)有菌株平均提高29%,轉(zhuǎn)化率提高12%。
實(shí)施例3采用紫外線按照常規(guī)方法對(duì)轉(zhuǎn)酮酶缺失D-核糖生產(chǎn)菌株進(jìn)行誘變,然后適當(dāng)稀釋涂布平板(平板培養(yǎng)基蛋白胨10g/L,酵母浸出物1g/L,硫酸鎂2g/L,氯化鈉3g/L,瓊脂20g/L,pH 7.0-7.2),36℃培養(yǎng),待長(zhǎng)出單菌落,挑取單菌落并移接斜面(斜面培養(yǎng)基蛋白胨10g/L,酵母浸出物1g/L,硫酸鎂2g/L,氯化鈉3g/L,瓊脂20g/L,pH 7.0-7.2),共挑取單菌落移接斜面539支,斜面放置,36℃培養(yǎng)52小時(shí),取成熟斜面一支對(duì)一支接種搖瓶(250ml三角瓶裝30ml發(fā)酵培養(yǎng)基葡萄糖120-150g/L,硫酸銨5g/L,玉米漿20g/L,硫酸錳0.2g/L,硫酸鎂0.4g/L,pH 6.0-7.2),36℃、200轉(zhuǎn)/分鐘搖瓶培養(yǎng)56小時(shí),發(fā)酵液4500轉(zhuǎn)/分鐘離心12分鐘,留取上清液,備用。
將離心后發(fā)酵清液稀釋至3-羥基丁酮的含量約10mg/L左右,然后取1ml,加蒸餾水4ml,充分混勻后再加入以蒸餾水配制的濃度為1g/L的肌酸1ml、以1mol/L NaOH配制的濃度為5g/L的α-萘酚1ml,室溫反應(yīng)50分鐘,以1cm比色池,波長(zhǎng)530nm,測(cè)定吸光度(A),根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算發(fā)酵液中3-羥基丁酮的含量。
上述涉及的3-羥基丁酮標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作方法是配制10mg/L的標(biāo)準(zhǔn)3-羥基丁酮水溶液,取6只比色管,按次序分別加入10mg/L的標(biāo)準(zhǔn)3-羥基丁酮水溶液0ml,0.5ml,1.0ml,1.5ml,2.0ml,2.5ml,然后在上述比色管中加入蒸餾水,使總體積至5ml,再依次加入1g/L的肌酸(蒸餾水配制)1ml、5g/L的α-萘酚(1mol/L NaOH配制)1ml,室溫反應(yīng)50分鐘,以1cm比色池,波長(zhǎng)530nm,測(cè)定吸光值(A),以3-羥基丁酮的量為橫坐標(biāo),吸光值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
同理,按常規(guī)實(shí)驗(yàn)室方法,以斐林試劑定糖法測(cè)定還原糖的含量;以SBA-40C型葡萄糖測(cè)定儀測(cè)定葡萄糖的含量。
選擇3-羥基丁酮、葡萄糖含量低、還原糖含量高的菌株再進(jìn)行搖瓶復(fù)篩。經(jīng)多次常規(guī)分離篩選后得到4株D-核糖產(chǎn)率和轉(zhuǎn)化率提高的菌株,其中D-核糖產(chǎn)率較現(xiàn)有菌株平均提高35%,轉(zhuǎn)化率提高15%。
權(quán)利要求
1.一種篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法,其步驟是以常規(guī)方法誘變轉(zhuǎn)酮酶缺失的D-核糖生產(chǎn)菌株,涂布平板分離單菌落,挑取單菌落移接斜面,35-37℃培養(yǎng)45-55小時(shí),選成熟斜面再以35-37℃、200轉(zhuǎn)/分鐘條件進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng)55-72小時(shí),取發(fā)酵液4000-5000轉(zhuǎn)/分鐘離心10-15分鐘,然后測(cè)定離心后發(fā)酵清液中的3-羥基丁酮、還原糖及葡萄糖含量,選擇3-羥基丁酮、葡萄糖含量低、還原糖含量高的菌株再進(jìn)行復(fù)篩,即可得到D-核糖產(chǎn)率及轉(zhuǎn)化率高的菌株。
2.如權(quán)利要求1所述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法,其特征是所述3-羥基丁酮、葡萄糖含量越低、還原糖含量越高,可判定D-核糖發(fā)酵菌株糖酵解途徑(EMP)代謝流越弱,D-核糖發(fā)酵菌株轉(zhuǎn)化葡萄糖生產(chǎn)D-核糖的能力的越大,該轉(zhuǎn)酮酶缺失的D-核糖生產(chǎn)菌株越有選擇價(jià)值。
3.如權(quán)利要求1所述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法,其特征是所述斜面培養(yǎng)條件是37℃培養(yǎng)48小時(shí)。
4.如權(quán)利要求1所述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法,其特征是所述發(fā)酵培養(yǎng)條件是37℃、200轉(zhuǎn)/分鐘條件發(fā)酵培養(yǎng)60小時(shí)。
5.如權(quán)利要求1所述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法,其特征是所述3-羥基丁酮含量的測(cè)定方法是將離心后發(fā)酵清液稀釋至可測(cè)定范圍濃度后取1ml,加蒸餾水4ml,充分混勻后再加入以蒸餾水配制的濃度為1g/L的肌酸1ml、以1mol/L NaOH配制的濃度為5g/L的α-萘酚1ml,室溫反應(yīng)50分鐘,以1cm比色池,波長(zhǎng)530nm,測(cè)定吸光度(A),根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算發(fā)酵液中3-羥基丁酮的含量。
6.如權(quán)利要求1所述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法,其特征是所述還原糖含量的測(cè)定采用斐林試劑定糖法。
7.如權(quán)利要求1所述的篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法,其特征是所述葡萄糖含量的測(cè)定采用SBA-40C型葡萄糖測(cè)定儀。
全文摘要
本發(fā)明公開(kāi)了一種篩選D-核糖高轉(zhuǎn)化率菌種的方法,其步驟是以常規(guī)方法誘變轉(zhuǎn)酮酶缺失的D-核糖生產(chǎn)菌株,涂布平板分離單菌落,挑取單菌落移接斜面,35-37℃培養(yǎng)45-55小時(shí),選成熟斜面再以35-37℃、200轉(zhuǎn)/分鐘條件進(jìn)行發(fā)酵培養(yǎng)55-72小時(shí),取發(fā)酵液4000-5000轉(zhuǎn)/分鐘離心10-15分鐘,然后測(cè)定離心后發(fā)酵清液中的3-羥基丁酮、還原糖及葡萄糖含量,選擇3-羥基丁酮、葡萄糖含量低、還原糖含量高的菌株再進(jìn)行復(fù)篩,即可得到D-核糖產(chǎn)率及轉(zhuǎn)化率高的菌株。本發(fā)明的方法操作簡(jiǎn)便、重復(fù)性好、成本低,特別適合生產(chǎn)菌種的分離篩選,在D-核糖的工業(yè)化生產(chǎn)中具有重要意義。
文檔編號(hào)C12N1/00GK1831104SQ200610043210
公開(kāi)日2006年9月13日 申請(qǐng)日期2006年3月14日 優(yōu)先權(quán)日2006年3月14日
發(fā)明者劉建軍, 趙祥穎, 張家祥, 田延軍, 李丕武, 韓延雷 申請(qǐng)人:山東省食品發(fā)酵工業(yè)研究設(shè)計(jì)院
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