本發(fā)明屬于生物技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種crispr/ncas9介導(dǎo)的定點(diǎn)堿基替換在植物中的應(yīng)用。
背景技術(shù):
crispr/cas9介導(dǎo)的基因組編輯技術(shù)已經(jīng)成為分子生物學(xué)中最強(qiáng)大的工具之一。首次在細(xì)菌中發(fā)現(xiàn),由sgrna和cas9兩部分組成(jineketal.,2012)。crispr/cas9是通過自身的核酸內(nèi)切酶活性引起靶位點(diǎn)dna序列雙鏈斷裂(double-strandbreaks,dsbs),然后通過非同源末端連接(non-homologousendjoining,nhej)或同源重組介導(dǎo)的修復(fù)(homology-directedrepair,hdr)兩種方式引入突變。nhej途徑誘導(dǎo)產(chǎn)生的突變大部分為核苷酸的插入或缺失,造成移碼突變,而hdr則由同源供體dna介導(dǎo)片段插入或核苷酸修正(jineketal.,2012)。crispr/cas9系統(tǒng)對靶位點(diǎn)的識別依賴于核酸之間堿基互補(bǔ)配對,可對任何緊隨pam(ngg)的20bp的靶點(diǎn)序列進(jìn)行編輯,且其靶點(diǎn)在基因組中的分布頻率很高,因此對于需要定點(diǎn)編輯的靶基因,更容易找到合適的靶位點(diǎn)。另外crispr/cas9系統(tǒng)可同時(shí)對同一基因的不同位點(diǎn)或多個(gè)基因的位點(diǎn)進(jìn)行定向編輯,使其運(yùn)用更加靈活。此外,crispr/cas9系統(tǒng)操作簡單快捷,每次打靶只需替換原有載體上20-30bp的核苷酸序列,更適宜規(guī)?;?,高通量操作(congetal.,2013;fengetal.,2014;gaoandzhao,2014;zhouetal.,2014;lawrensonetal.,2015;liuetal.,2015;maetal.,2015;wangetal.,2015;xieetal.,2015;pauliiiandqi,2016)。隨著crispr/cas9技術(shù)在人類與動物細(xì)胞系中建立并應(yīng)用,經(jīng)過改造的crispr/cas9系統(tǒng)也迅速地被應(yīng)用到擬南芥、煙草、高粱、水稻、小麥、玉米等不同植物基因組的定向編輯研究中,并且獲得較高的誘導(dǎo)突變率和可穩(wěn)定遺傳的基因組編輯植株(shanetal.,2013;puchtaandfauser,2014;voytasandgao,2014;lietal.,2015;maetal.,2015;svitashevetal.,2015;endoetal.,2016;gaoetal.,2016;sunetal.,2016)。
盡管crispr/cas9作為一種新的靶向基因修飾技術(shù),展現(xiàn)了廣闊的發(fā)展?jié)摿蛻?yīng)用前景,并在農(nóng)作物改良中得到廣泛應(yīng)用,但目前主要局限于基因隨機(jī)突變和敲除。農(nóng)作物中含有大量農(nóng)藝性狀是由單堿基的突變導(dǎo)致,傳統(tǒng)crispr/cas9技術(shù)引入dsb后,與非同源末端連接的隨機(jī)過程相比,hdr總是以相當(dāng)?shù)偷念l率發(fā)生,只有少數(shù)報(bào)道表明crispr/cas9介導(dǎo)的hdr在作物中可行(lietal.,2015;svitashevetal.,2015;endoetal.,2016;shietal.,2016;sunetal.,2016),使得大量農(nóng)藝性狀無法得到快速的改良。
nishidaetal.(2016)將dcas9或nicked-cas9(ncas9,d10a)與來自七鰓鰻(sealamprey)免疫系統(tǒng)的激活誘導(dǎo)性胞苷脫氨(activation-inducedcytidinedeaminase,aid)融合在一起。在正常情況下,這種aid酶在免疫球蛋白和抗體基因中產(chǎn)生突變從而讓免疫系統(tǒng)具有多樣性。aid作用在單鏈dna上,將胞嘧啶(c)替換為尿嘧啶(u),隨后在一輪dna復(fù)制中,這種尿嘧啶(u)被轉(zhuǎn)化為胸腺嘧啶(t)。研究結(jié)果表明當(dāng)在向?qū)na(grna)的引導(dǎo)下,這種蛋白復(fù)合物靶向作用于can1基因,而且相對于非靶向的選擇性標(biāo)志物,can1基因發(fā)生突變的頻率增加了1000倍。利用全基因組測序,研究人員發(fā)現(xiàn)很少的脫靶突變,只比背景突變率略有增加。komoretal.(2016)將ncas9(d10a)與胞苷脫氨酶融合,在grna的指導(dǎo)下,ncas9(d10a)到達(dá)指定位點(diǎn),可作為“單堿基編輯器”將在非目標(biāo)鏈的第4-8位目標(biāo)胞嘧啶定點(diǎn)替換。通過dna復(fù)制或修復(fù)后,尿嘧啶被轉(zhuǎn)化成胸腺嘧啶,最終由c突變成t,或者g突變成a。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
本發(fā)明的一個(gè)目的是提供如下(1)-(7)中任一種所述的應(yīng)用:
(1)crispr/cas9系統(tǒng)、脫氨酶和植物基因表達(dá)啟動子在定點(diǎn)編輯植物或農(nóng)作物基因中的應(yīng)用;
所述植物基因表達(dá)啟動子啟動crispr/cas9系統(tǒng)中cas9核酸酶和脫氨酶的表達(dá);
(2)crispr/cas9系統(tǒng)和脫氨酶在定點(diǎn)編輯植物或農(nóng)作物基因中的應(yīng)用;
(3)由cas9核酸酶和脫氨酶組成的融合蛋白、待編輯基因的sgrna和植物基因表達(dá)啟動子在定點(diǎn)編輯植物或農(nóng)作物基因中的應(yīng)用;
所述植物基因表達(dá)啟動子驅(qū)動由所述cas9核酸酶和所述脫氨酶組成的融合蛋白基因的表達(dá);
(4)crispr/cas9系統(tǒng)、脫氨酶、尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白和植物基因表達(dá)啟動子在定點(diǎn)編輯植物或農(nóng)作物基因中的應(yīng)用;
所述植物基因表達(dá)啟動子啟動crispr/cas9系統(tǒng)中cas9核酸酶、脫氨酶和尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白的表達(dá);
(5)crispr/cas9系統(tǒng)、脫氨酶和尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白在定點(diǎn)編輯植物或農(nóng)作物基因中的應(yīng)用;
(6)由cas9核酸酶、脫氨酶和尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白組成的融合蛋白、待編輯基因的sgrna和植物基因表達(dá)啟動子在定點(diǎn)編輯植物或農(nóng)作物基因中的應(yīng)用;
所述植物基因表達(dá)啟動子驅(qū)動由所述cas9核酸酶、所述脫氨酶和所述尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白組成的融合蛋白的編碼基因的表達(dá);
(7)由cas9核酸酶、脫氨酶、連接所述cas9核酸酶與所述脫氨酶的連接肽和尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白組成的融合蛋白、待編輯基因的sgrna和植物基因表達(dá)啟動子在定點(diǎn)編輯植物或農(nóng)作物基因中的應(yīng)用;
所述植物基因表達(dá)啟動子驅(qū)動由所述cas9核酸酶、所述脫氨酶、所述連接肽和所述尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白組成的融合蛋白的編碼基因的表達(dá)。
上述應(yīng)用中,所述脫氨酶為apobec1,其編碼基因序列為序列1第4838-5524位;
所述尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白為uracildnaglycosylaseinhibitor,其編碼基因序列為序列1第392-688位;
所述cas9核酸酶為ncas9(d10a),其編碼基因序列為序列1第689-4789位;
所述連接肽的編碼基因序列為序列1第4790-4837位;
所述植物基因表達(dá)啟動子的核苷酸序列為序列1第5545-7535位;
所述融合蛋白的編碼基因序列為序列1第392-5524位;
所述待編輯基因?yàn)閛ssbeiib和ospds;
所述sgrna的核苷酸序列為序列1第7785-8268位或序列2第7785-8268位或序列3第7785-8268位。
本發(fā)明的另一個(gè)目的是提供一種定點(diǎn)編輯植物或農(nóng)作物基因的方法。
本發(fā)明提供的方法為如下(1)或(2):
(1)所述方法包括如下步驟:將cas9核酸酶編碼基因、脫氨酶編碼基因、待編輯基因的sgrna的編碼基因和植物基因啟動子導(dǎo)入出發(fā)植物,實(shí)現(xiàn)出發(fā)植物中靶基因的定點(diǎn)編輯;
(2)所述方法包括如下步驟:將cas9核酸酶編碼基因、脫氨酶編碼基因、連接所述cas9核酸酶與所述脫氨酶的連接肽的編碼基因、尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白的編碼基因、待編輯基因的sgrna的編碼基因和植物基因啟動子導(dǎo)入出發(fā)植物,實(shí)現(xiàn)出發(fā)植物中靶基因的定點(diǎn)編輯。
上述方法中,
(1)中,所述cas9核酸酶編碼基因、所述脫氨酶編碼基因、所述待編輯基因的sgrna的編碼基因和所述植物基因啟動子通過重組質(zhì)粒導(dǎo)入出發(fā)植物中;
所述重組質(zhì)粒包括由cas9核酸酶和脫氨酶組成融合蛋白的編碼基因、所述待編輯基因的sgrna的編碼基因和植物基因啟動子;
所述植物基因啟動子驅(qū)動由所述cas9核酸酶和所述脫氨酶組成的融合蛋白基因的表達(dá);
(2)中,所述cas9核酸酶編碼基因、所述脫氨酶編碼基因、所述連接所述cas9核酸酶與所述脫氨酶的連接肽的編碼基因、所述尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白基因、所述待編輯基因的sgrna的編碼基因和所述植物基因啟動子通過重組質(zhì)粒導(dǎo)入出發(fā)植物中;
所述重組質(zhì)粒包括由cas9核酸酶、脫氨酶、連接所述cas9核酸酶與所述脫氨酶的連接肽和尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白組成的融合蛋白的編碼基因、所述待編輯基因的sgrna的編碼基因和植物基因啟動子;
所述植物基因啟動子驅(qū)動由所述cas9核酸酶、所述脫氨酶、所述連接所述cas9核酸酶與所述脫氨酶的連接肽和所述尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白組成的融合蛋白的編碼基因的表達(dá)。
上述方法中,所述脫氨酶為apobec1,其編碼基因序列為序列1第4838-5524位;
所述尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白為uracildnaglycosylaseinhibitor,其編碼基因序列為序列1第392-688位;
所述cas9核酸酶為ncas9(d10a),其編碼基因序列為序列1第689-4789位;
所述連接肽的編碼基因序列為序列1第4790-4837位;
所述植物基因表達(dá)啟動子的核苷酸序列為序列1第5545-7535位;
所述融合蛋白的編碼基因序列為序列1第392-5524位;
所述待編輯基因?yàn)閛ssbeiib和ospds;
所述sgrna的核苷酸序列為序列1第7785-8268位或序列2第7785-8268位或序列3第7785-8268位。
上述方法中,所述重組質(zhì)粒的核苷酸序列為序列1、序列2或序列3。
上述方法中,所述植物為單子葉植物或雙子葉植物;所述單子葉植物具體為水稻;所述水稻品種具體為kitaake(oryzasatival.subsp.japonica)。
上述重組質(zhì)粒也屬于本發(fā)明的保護(hù)范圍。
本發(fā)明還有一個(gè)目的是提供一種定點(diǎn)編輯植物基因組的系統(tǒng)。
本發(fā)明提供的定點(diǎn)編輯植物基因組的系統(tǒng)包括上述重組質(zhì)粒。
本發(fā)明的最后一個(gè)目的是提供上述重組質(zhì)粒或上述系統(tǒng)的新用途。
本發(fā)明提供了上述重組質(zhì)?;蛏鲜鱿到y(tǒng)在定點(diǎn)編輯植物或農(nóng)作物基因中的應(yīng)用。
上述應(yīng)用或方法中,所述定點(diǎn)編輯為定點(diǎn)堿基替換。
上述應(yīng)用或方法中,所述crispr/cas9系統(tǒng)為crispr/ncas9系統(tǒng),所述crispr/ncas9系統(tǒng)具體為crispr/ncas9(d10a)系統(tǒng)。
本發(fā)明提供了一種定點(diǎn)編輯植物基因組的系統(tǒng),該系統(tǒng)包括be3植物表達(dá)載體,be3植物表達(dá)載體表達(dá)由ncas9(d10a)、脫氨酶(apobec1)和尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白(ugi)組成的融合蛋白,并以水稻ospds和ossbeiib為靶基因?qū)υ撓到y(tǒng)進(jìn)行驗(yàn)證。結(jié)果表明,在所選的3個(gè)靶點(diǎn)中,均獲得預(yù)期定點(diǎn)突變植株,既在靶點(diǎn)序列的4-8位置的c突變成t(或g突變成a),在水稻中實(shí)現(xiàn)了堿基的精確的點(diǎn)突變,且效率最高達(dá)到20%左右,而且該方法操作簡單、可行,與構(gòu)建crispr/cas9并無明顯差別,為農(nóng)作物育種提供了一種可行的有效的堿基替換方法,在農(nóng)業(yè)育種方面具有強(qiáng)大的應(yīng)用潛力,為快速改良農(nóng)作物重要農(nóng)藝性狀提供了基礎(chǔ)。
附圖說明
圖1為pcxun-be3載體框架圖。
圖2為轉(zhuǎn)基因植株的鑒定。注:a為載體t-dna結(jié)構(gòu)圖及引物所在位置。b,c和d分別為p2,s3和s5轉(zhuǎn)基因植株的cas9(d10a),grna及hptii基因的檢測。
圖3為ossbeiib基因s5靶點(diǎn)的轉(zhuǎn)基因植株及序列的鑒定。注:a為be3定點(diǎn)突變系統(tǒng)原理圖。b為ossbeiib基因結(jié)構(gòu)圖及s5靶點(diǎn)所在位置,pcr產(chǎn)物酶切鑒定圖?!?”表示pcr產(chǎn)物經(jīng)過酶切,“-”表示pcr產(chǎn)物沒經(jīng)過酶切。c為所有植株pcr產(chǎn)物的克隆測序結(jié)果。d為s5-17和s5-26兩個(gè)株系基因型測序峰圖。pam由藍(lán)色表示,預(yù)期突變成的堿基由紅色表示,非預(yù)期的突變堿基由綠色表示。
圖4為ossbeiib基因s3靶點(diǎn)的轉(zhuǎn)基因植株及序列的鑒定。注:a為ossbeiib基因結(jié)構(gòu)圖及s3靶點(diǎn)所在位置,pcr產(chǎn)物電泳圖。b為所有植株pcr產(chǎn)物的克隆測序結(jié)果。c為s3-1和s3-18兩個(gè)株系基因型測序峰圖。pam由藍(lán)色表示,預(yù)期突變成的堿基由紅色表示,非預(yù)期的突變堿基由綠色表示。
圖5為ossbeiib基因p2靶點(diǎn)的轉(zhuǎn)基因植株及序列的鑒定。注:a為ossbeiib基因結(jié)構(gòu)圖及p2靶點(diǎn)所在位置,pcr產(chǎn)物酶切鑒定圖?!?”表示pcr產(chǎn)物經(jīng)過酶切,“-”表示pcr產(chǎn)物沒經(jīng)過酶切。c為所有植株pcr產(chǎn)物的克隆測序結(jié)果。d為p2-21和p2-79兩個(gè)株系基因型測序峰圖。pam由藍(lán)色表示,預(yù)期突變成的堿基由紅色表示,非預(yù)期的突變堿基由綠色表示。
具體實(shí)施方式
下述實(shí)施例中所使用的實(shí)驗(yàn)方法如無特殊說明,均為常規(guī)方法。
下述實(shí)施例中所用的材料、試劑等,如無特殊說明,均可從商業(yè)途徑得到。
下述實(shí)施例中的定量試驗(yàn),均設(shè)置三次重復(fù)實(shí)驗(yàn),結(jié)果取平均值。
下述實(shí)施例中的用于水稻轉(zhuǎn)化的水稻材料為kitaake(oryzasatival.subsp.japonica),由中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院作物科學(xué)研究所獲得。
下述實(shí)施例中的pcmv-be3載體在文獻(xiàn)“komorac,kimyb,packerms,zurisja,liudr.2016.programmableeditingofatargetbaseingenomicdnawithoutdouble-strandeddnacleavage.nature.”中公開過,公眾可以從中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院作物科學(xué)研究所獲得。
下述實(shí)施例中所用的內(nèi)切酶、試劑盒和pcr酶均購自試劑公司,其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
下述實(shí)施例中的引物和dna合成及測序均在華大公司完成。
下述實(shí)施例中的aam培養(yǎng)基(ph5.2)是將mssalts&vitamins鹽、蔗糖、mes、葡萄糖、酪蛋白氨基酸、乙酰丁香酮和100ml10xaaaminoacids混勻得到的培養(yǎng)基,其中各溶質(zhì)在aam培養(yǎng)基中的濃度分別為4.3g/lmssalts&vitamins鹽、68.5g/l蔗糖、0.5g/lmes、36g/l葡萄糖、500mg/l酪蛋白氨基酸、40mg/l乙酰丁香酮。上述10xaaaminoacids溶液為將l-谷氨酰胺、l-天(門)冬氨酸、l-精氨酸、甘氨酸和水混勻得到的溶液,其中各溶質(zhì)在10xaaaminoacids溶液中的濃度為:8.76g/ll-谷氨酰胺、2.66g/ll-天(門)冬氨酸、1.74g/ll-精氨酸和75mg/l甘氨酸。
下述實(shí)施例中的r1培養(yǎng)基(ph5.8)是將ms&vitamins鹽、蔗糖、mes、酪蛋白氨基酸、l-脯氨酸、2,4-d、植物凝膠和水混勻得到的培養(yǎng)基,其中各溶質(zhì)在r1培養(yǎng)基中的濃度分別為:4.3g/lms&vitamins鹽、30g/l蔗糖、0.5g/lmes、300mg/l酪蛋白氨基酸、2.8g/ll-脯氨酸、2mg/l2,4-d、4g/l植物凝膠。
下述實(shí)施例中的r2培養(yǎng)基(ph5.2)是將ms&vitamins鹽、蔗糖、mes、酪蛋白氨基酸、2,4-d、植物凝膠、乙酰丁香酮和水混勻得到的培養(yǎng)基,其中各溶質(zhì)在r2培養(yǎng)基中的濃度分別為:4.3g/lms&vitamins鹽、30g/l蔗糖、0.5g/lmes、300mg/l酪蛋白氨基酸、2mg/l2,4-d、4g/l植物凝膠、20mg/ml乙酰丁香酮。
下述實(shí)施例中的r1篩選培養(yǎng)基(ph5.8)是將ms&vitamins鹽、蔗糖、mes、酪蛋白氨基酸、l-脯氨酸、2,4-d、植物凝膠和水混勻得到的培養(yǎng)基,其中各溶質(zhì)在r1篩選培養(yǎng)基中的濃度為:4.3g/lms&vitamins鹽、30g/l蔗糖、0.5g/lmes、300mg/l酪蛋白氨基酸、2.8g/ll-脯氨酸、2mg/l2,4-d、4g/l植物凝膠。
下述實(shí)施例中的r4分化培養(yǎng)基(ph5.8)是將ms&vitamins鹽、蔗糖、mes、酪蛋白氨基酸、山梨醇、激動素、naa、植物凝膠和水混勻得到的培養(yǎng)基,其中各溶質(zhì)在r4分化培養(yǎng)基中的濃度分別為:4.3g/lms&vitamins鹽、30g/l蔗糖、0.5g/lmes、2g/l酪蛋白氨基酸、30g/l山梨醇、2mg/l激動素、1mg/lnaa、4g/l植物凝膠。
下述實(shí)施例中的r5培養(yǎng)基(ph5.8)是將ms&vitamins鹽、蔗糖、mes、植物凝膠和水混勻得到的培養(yǎng)基,其中各溶質(zhì)在r5培養(yǎng)基中的濃度分別為:2.15g/lms&vitamins鹽、15g/l蔗糖、0.5g/lmes、2g/l植物凝膠。
下述實(shí)施例中所用的引物如表1所示:
表1、引物序列
下述實(shí)施例中靶點(diǎn)位置及序列如表2所示。
表2、靶點(diǎn)位置及序列
注:pam位點(diǎn)由波浪線表示,脫氨酶靶點(diǎn)由加粗黑體表示,g#和c#,#代表堿基所在位置,遠(yuǎn)離pam位點(diǎn)的起始位點(diǎn)為第一個(gè)堿基。酶切位點(diǎn)由下劃線表示。
實(shí)施例1、一種crispr/ncas9介導(dǎo)的定點(diǎn)堿基替換在植物中的應(yīng)用
一、表達(dá)載體的構(gòu)建
1、pcxun-be3載體的構(gòu)建
(1)用限制性內(nèi)切酶bamhi酶切pcxun-cas9載體,得到線性化的載體;
(2)以be-f/r為引物,pcmv-be3載體為模板進(jìn)行pcr擴(kuò)增,得到pcr產(chǎn)物,該pcr產(chǎn)物的5’和3’最末端的序列分別和線性化載體兩末端序列完全一致;
(3)采用全式金公司的peasy-uniseamlesscloningandassemblykit將步驟(1)獲得的線性化的載體、步驟(2)獲得的pcr產(chǎn)物通過同源重組進(jìn)行連接,獲得載體pcxun-be3(圖1),從圖中可以看出:pcxun-be3載體包括表達(dá)盒甲,該表達(dá)盒甲依次包括玉米u(yù)biquitin啟動子、脫氨酶(apobec1)的編碼基因、連接ncas9(d10a)核酸酶和脫氨酶的連接肽(xtenlinker)、ncas9(d10a)核酸酶的編碼基因、植物表達(dá)啟動子ubi、尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白(ugi)的編碼基因。
2、利用重疊pcr方法構(gòu)建p2、s3及s5的grna表達(dá)盒pcxun-be3-p2、pcxun-be3-s3和pcxun-be3-s5載體
(1)s5的grna表達(dá)盒pcxun-be3-s5的構(gòu)建
a、用限制性內(nèi)切酶pmei酶切pcxun-be3載體,得到線性化的載體;
b、以posu3-sgrna質(zhì)粒為模板,分別利用引物s5-f/hrpme-u3r和hrpme-u3f/s5-r進(jìn)行pcr擴(kuò)增,并將擴(kuò)增產(chǎn)物1:1混合后做為模板,用引物hrpme-u3f/hrpme-u3r進(jìn)行擴(kuò)增,回收pcr產(chǎn)物;
c、采用全式金公司的peasy-uniseamlesscloningandassemblykit將步驟a獲得的線性化的載體、步驟b獲得的pcr產(chǎn)物通過同源重組進(jìn)行連接,鑒定陽性克隆并測序驗(yàn)證,得到s5的grna表達(dá)盒pcxun-be3-s5。
經(jīng)過測序驗(yàn)證:s5的grna表達(dá)盒pcxun-be3-s5的核苷酸序列為序列1,其中序列1的第392-5524位為由ncas9(d10a)核酸酶、脫氨酶(apobec1)、連接ncas9(d10a)核酸酶和脫氨酶的連接肽(xtenlinker)、尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白(ugi)組成的融合蛋白be3的編碼基因序列、第5545-7535位為植物基因表達(dá)啟動子ubi的核苷酸序列,第7785-8268位為sgrna序列。
(2)s3的grna表達(dá)盒pcxun-be3-s3的構(gòu)建
a、用限制性內(nèi)切酶pmei酶切pcxun-be3載體,得到線性化的載體;
b、以posu3-sgrna質(zhì)粒為模板,分別利用引物s3-f/hrpme-u3r和hrpme-u3f/s3-r進(jìn)行pcr擴(kuò)增,并將擴(kuò)增產(chǎn)物1:1混合后做為模板,用引物hrpme-u3f/hrpme-u3r進(jìn)行擴(kuò)增,回收pcr產(chǎn)物;
c、采用全式金公司的peasy-uniseamlesscloningandassemblykit將步驟a獲得的線性化的載體、步驟b獲得的pcr產(chǎn)物通過同源重組進(jìn)行連接,鑒定陽性克隆并測序驗(yàn)證,得到s3的grna表達(dá)盒pcxun-be3-s3。
經(jīng)過測序驗(yàn)證:s3的grna表達(dá)盒pcxun-be3-s3的核苷酸序列為序列2,其中序列2的第392-5524位為由ncas9(d10a)核酸酶、脫氨酶(apobec1)、連接ncas9(d10a)核酸酶和脫氨酶的連接肽(xtenlinker)、尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白(ugi)組成的融合蛋白be3的編碼基因序列、第5545-7535位為植物基因表達(dá)啟動子ubi的核苷酸序列,第7785-8268位為sgrna序列。
(3)p2的grna表達(dá)盒pcxun-be3-p2的構(gòu)建
a、用限制性內(nèi)切酶pmei酶切pcxun-be3載體,得到線性化的載體;
b、以posu3-sgrna質(zhì)粒為模板,分別利用引物p2-f/hrpme-u3r和hrpme-u3f/p2-r進(jìn)行pcr擴(kuò)增,并將擴(kuò)增產(chǎn)物1:1混合后做為模板,用引物hrpme-u3f/hrpme-u3r進(jìn)行擴(kuò)增,回收pcr產(chǎn)物;
c、采用全式金公司的peasy-uniseamlesscloningandassemblykit將步驟a獲得的線性化的載體、步驟b獲得的pcr產(chǎn)物通過同源重組進(jìn)行連接,鑒定陽性克隆并測序驗(yàn)證,得到p2的grna表達(dá)盒pcxun-be3-p2。
經(jīng)過測序驗(yàn)證:p2的grna表達(dá)盒pcxun-be3-p2的核苷酸序列為序列3,其中序列3的第392-5524位為由ncas9(d10a)核酸酶、脫氨酶(apobec1)、連接ncas9(d10a)核酸酶和脫氨酶的連接肽(xtenlinker)、尿嘧啶dna糖基化酶抑制蛋白(ugi)組成的融合蛋白be3的編碼基因序列、第5545-7535位為植物基因表達(dá)啟動子ubi的核苷酸序列,第7785-8268位為sgrna序列。
二、重組菌的構(gòu)建
分別將步驟一獲得的重組質(zhì)粒pcxun-be3-s5、pcxun-be3-s3和pcxun-be3-p2導(dǎo)入農(nóng)桿菌eha105,分別得到重組農(nóng)桿菌pcxun-be3-s5/eha105、pcxun-be3-s3/eha105和pcxun-be3-p2/eha105。
三、轉(zhuǎn)基因水稻的獲得
1、分別將重組農(nóng)桿菌pcxun-be3-s5/eha105、pcxun-be3-s3/eha105及pcxun-be3-p2/eha105在lb培養(yǎng)基上培養(yǎng)兩天后,收集農(nóng)桿菌,并用aam培養(yǎng)基重懸,od600調(diào)到0.3-0.5,分別得到od600為0.3-0.5的菌液。
2、選取飽滿的kitaake水稻種子,剝?nèi)シN皮,滅菌洗滌后,均勻的點(diǎn)入r1培養(yǎng)基中,28℃持續(xù)光照2-3周誘導(dǎo)愈傷組織的形成。將形成的愈傷組織轉(zhuǎn)移到新的r1培養(yǎng)基上培養(yǎng)3-5天,然后分別轉(zhuǎn)移到上述od600為0.3-0.5的菌液中侵染5分鐘,侵染后用濾紙吸干表面菌液并轉(zhuǎn)移到r2培養(yǎng)基上在25℃下培養(yǎng)三天,再轉(zhuǎn)移至含有濃度為50mg/l潮霉素的r1篩選培養(yǎng)基上,在28℃條件下持續(xù)光照2周后轉(zhuǎn)移至新的含有濃度為50mg/l潮霉素的r1篩選培養(yǎng)基,在28℃條件下持續(xù)光照2周。選取生長良好呈嫩黃色的陽性愈傷組織,用無菌鑷子移至含有濃度為50mg/l潮霉素的r4分化培養(yǎng)基中,在28℃條件下持續(xù)光照培養(yǎng)。待分化出來的幼苗長至2-5mm時(shí),將幼苗轉(zhuǎn)入不含激素和抗生素的r5培養(yǎng)基中,在28℃條件下持續(xù)光照培養(yǎng)2-3周,之后移入土中置于溫室中生長(培養(yǎng)條件為:溫度28-30℃,光照為16h光照/8h黑暗),分別得到t0代轉(zhuǎn)p2水稻植株、t0代轉(zhuǎn)s3水稻植株和t0代轉(zhuǎn)s5水稻植株。
3、轉(zhuǎn)基因水稻植株的鑒定
根據(jù)載體序列分別設(shè)計(jì)檢測be3,grna和hptii基因引物be3-f/r,u3-f/r和hptii-f/r(表2),對獲得的所有t0代轉(zhuǎn)s5水稻植株、t0代轉(zhuǎn)s3水稻植株和t0代轉(zhuǎn)p2水稻植株進(jìn)行pcr鑒定并統(tǒng)計(jì)結(jié)果。
轉(zhuǎn)基因水稻植株的pcr鑒定結(jié)果如圖2所示。結(jié)果表明:共獲得52顆陽性t0代轉(zhuǎn)s5水稻植株、38顆陽性t0代轉(zhuǎn)s3水稻植株及88顆陽性t0代轉(zhuǎn)p2水稻植株。
四、定點(diǎn)編輯的檢測
1、定點(diǎn)編輯ossbeiib的s5靶點(diǎn)的基因型鑒定
利用引物s5testf/r對步驟三獲得的52顆陽性t0代轉(zhuǎn)s5水稻植株的基因組dna進(jìn)行擴(kuò)增,得到pcr產(chǎn)物,用bstni酶切pcr產(chǎn)物,如果轉(zhuǎn)s5水稻植株中的靶點(diǎn)序列發(fā)生所期待的突變,則該轉(zhuǎn)s5水稻植株對應(yīng)的pcr產(chǎn)物將無法被相對應(yīng)的限制性內(nèi)切酶bstni酶切。
酶切鑒定結(jié)果表明:52顆陽性t0代轉(zhuǎn)s5水稻植株中共有23顆陽性t0代轉(zhuǎn)s5水稻植株的pcr產(chǎn)物完全不能或者部分不能被bstni切開,說明在該酶切位點(diǎn)處發(fā)生突變,將上述23顆植株記作定點(diǎn)突變的植株,并對其進(jìn)行測序。
測序結(jié)果如圖3所示。根據(jù)測序結(jié)果可以將23顆定點(diǎn)突變的植株分成如下三類:第一類共有10顆植株,為第五位和第六位堿基由g突變成a(g5突變成a5和g6突變成a6),其中,3顆植株為純合類型(兩條同源染色體的第五位和第六位堿基均由g突變成a,s5-17、s5-36、和s5-46)、6顆為雜合類型(s5-1、s5-8、s5-21、s5-33、s5-42和s5-43),1顆為雙等位突變類型(s5-34),第一類(期待突變類型)占所有突變類型的43%(10/23),相對于所有轉(zhuǎn)基因植株而言,效率達(dá)到20%(10/52);第二類共有8顆植株,為同時(shí)包含第五位和/或第六位堿基由g突變成a及g突變成c或者t,其中,一顆為純合類型(s5-26),另外7顆為雜合類型(s5-10、s5-25、s5-44、s5-45、s5-48、s5-50和s5-52);第三類共有5顆植株,這一類型突變均為非期待類型,主要是位點(diǎn)的插入和缺失,3顆為雙等位突變(s5-18、s5-31和s4-47),2顆為雜合類型(s5-16和s5-23)。在s5靶點(diǎn)內(nèi)同樣含有其他的g,但都沒有發(fā)生相應(yīng)的突變。
2、定點(diǎn)編輯ossbeiib的s3靶點(diǎn)的基因型鑒定
利用引物s3testf/r對步驟三獲得的38顆陽性t0代轉(zhuǎn)s3水稻植株的基因組dna進(jìn)行擴(kuò)增,得到pcr產(chǎn)物,并對pcr擴(kuò)增產(chǎn)物直接測序。
測序結(jié)果如圖4所示。測序結(jié)果表明,38顆陽性t0代轉(zhuǎn)s3水稻植株中共有11顆定點(diǎn)突變的植株,根據(jù)測序結(jié)果可以將11顆定點(diǎn)突變的植株分成如下三類:第一類共包含4顆植株,為只含有所期待的突變類型(c突變成t),分別為s3-1,s3-4,s3-26和s3-29,其中,s3-1,s3-4和s3-29為純合植株,s3-26為雜合型植株,雜合型植株s3-26的一條同源染色體上的三個(gè)靶位點(diǎn)均發(fā)生突變(第一,第二和第七位堿基均由c突變?yōu)閠),另外一條同源染色體的三個(gè)靶位點(diǎn)均為野生型;第二類只有一顆植株,為s3-6,s3-6的一條同源染色體的第七位堿基由c突變?yōu)閠,另外一條同源染色體的第七位堿基由c突變?yōu)間;第三類共有6顆植株,均為非期待的類型,其中,4顆為純合類型,為第七位堿基均由c突變?yōu)間,另外2顆植株為一條鏈在第一位堿基和第七位堿基均由c突變成g,另外一條鏈僅第七位堿基由c突變成g。
3、定點(diǎn)編輯ospds的p2靶點(diǎn)的基因型鑒定
利用引物p2testf/r對獲得88顆陽性t0代轉(zhuǎn)p2水稻植株的基因組dna進(jìn)行擴(kuò)增,得到pcr產(chǎn)物,用ecori酶切pcr產(chǎn)物,如果轉(zhuǎn)p2水稻植株中的靶點(diǎn)序列發(fā)生所期待的突變,則該轉(zhuǎn)p2水稻植株對應(yīng)的pcr產(chǎn)物將無法被相對應(yīng)的限制性內(nèi)切酶bstni酶切。
利用ecori酶切t0代轉(zhuǎn)p2水稻植株的pcr產(chǎn)物,結(jié)果表明有2顆t0代轉(zhuǎn)p2水稻植株(p2-21和p2-79)的pcr產(chǎn)物為部分切開,說明在該酶切位點(diǎn)處發(fā)生突變,將上述2顆植株記作定點(diǎn)突變的植株,并對其進(jìn)行測序。
測序結(jié)果如圖5所示。結(jié)果表明,p2-21和p2-79均為雜合類型,p2-21的一條同源染色體在靶點(diǎn)序列的第八位和第十位堿基均由g突變成a,另外一條同源染色體為野生型。p2-79的一條同源染色體在靶點(diǎn)序列的第八位堿基由g突變成c,第十位堿基沒有發(fā)生變化,另外一條同源染色體為野生型。
序列表
<110>中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院作物科學(xué)研究所
<120>一種crispr/ncas9介導(dǎo)的定點(diǎn)堿基替換在植物中的應(yīng)用
<160>3
<210>1
<211>16981bp
<212>dna
<213>人工序列
<220>
<223>
<400>1
gaattcgagctcggtacccctggcgaaagggggatgtgctgcaaggcgattaagttgggt60
aacgccagggttttcccagtcacgacgttgtaaaacgacggccagtgaattcccgatcta120
gtaacatagatgacaccgcgcgcgataatttatcctagtttgcgcgctatattttgtttt180
ctatcgcgtattaaatgtataattgcgggactctaatcataaaaacccatctcataaata240
acgtcatgcattacatgttaattattacatgcttaacgtaattcaacagaaattatatga300
taatcatcgcaagaccggcaacaggattcaatcttaagaaactttattgccaaatgtttg360
aacgatcggggaaattcggatccccaatactttagactttcctcttcttcttgggagaac420
caccagagagcatcttaatcttgttctcaccgttgctatcctgtatgaccagagcccaag480
gcttgtattcaggggcgtcgctagtcagaagcatgacattctcgtcggtgctctcgtcgt540
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cctttaagatctggctgcccagttctttaataccctcttctattctcttcatccgctctc2460
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cagtgatggccctactacattcgccgcatgggctccagctgagaaaccaggtaatgctgc5280
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cgtgcttgttagtgttctgtgatgtatgtcgccaaatggagtgccggcccccccaattaa5400
tttcgtaaagcaggcaggtctccttgcggagctctctcggatcgaagaatacctcaaact5460
catggggctcgatccgccgtctcaatgtggggtccacagccactgggccagtctctgagc5520
tcatagtattggggatcccccgggctgcagaagtaacaccaaacaacagggtgagcatcg5580
acaaaagaaacagtaccaagcaaataaatagcgtatgaaggcagggctaaaaaaatccac5640
atatagctgctgcatatgccatcatccaagtatatcaagatcaaaataattataaaacat5700
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catcagtaaaacccgcatcaacatgtatacctatcctagatcgatatttccatccatcat6060
cttcaattcgtaactatgaatatgtatggcacacacatacagatccaaaattaataaatc6120
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