本發(fā)明公開了調(diào)控植物耐旱性的花生AhALDH10基因,屬于基因工程領(lǐng)域。
背景技術(shù):
乙醛脫氫酶(ALDH)是一類依賴于NAD(P)+的酶類,負(fù)責(zé)催化生物體內(nèi)各種醛類至對(duì)應(yīng)羧酸。根據(jù)蛋白序列差異,植物中至今發(fā)現(xiàn)有13個(gè)ALDH家族(Sophos and Vasiliou 2003),除丙二醛等共通底物外,各家族ALDH有不同的?;孜?,參與多條生化途徑。多數(shù)ALDH由于有不同程度的解細(xì)胞醛毒功能,被認(rèn)為參與植物鹽、旱等脅迫響應(yīng)(Brocker et al.2013),其中,ALDH10,12,18三類,由于參與甜菜堿與脯氨酸的代謝,作為耐逆相關(guān)ALDH被研究得較多。
ALDH10在植物中被認(rèn)為參與氨基醛類的氧化,如氨基丁醛,所以又被稱為氨基醛脫氫酶(AMADH)(Sebela et al.2000)。此外,ALDH10又被稱為BADH,負(fù)責(zé)把甜菜醛(betaine aldehyde,BA)氧化成甜菜堿(glycinebetaine,GB),參與植物的耐逆途徑,如菠菜(Incharoensakdi et al.2000),紅樹(Hibino et al.2001)和擬南芥(Missihoun 2011),雖然大多數(shù)作物中的ALDH10對(duì)甜菜醛的催化活性不如氨基醛。一些異源轉(zhuǎn)基因?qū)嶒?yàn)也能從側(cè)面驗(yàn)證ALDH10對(duì)提高植物耐逆能力有幫助(Zhou et al.2008)。
技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:
技術(shù)問題
本發(fā)明的目的在于提供一種調(diào)控植物耐旱性的花生AhALDH10基因及其應(yīng)用。
技術(shù)方案
本發(fā)明提供一種調(diào)控植物耐旱性的花生AhALDH10基因,所述基因cDNA序列如SEQ ID NO.1所示。
所述的調(diào)控植物耐旱性的花生AhALDH10基因編碼的蛋白質(zhì),具有序列表中SEQ ID NO.2所述的氨基酸序列。
本發(fā)明所述AhALDH10基因的應(yīng)用。具體指其通過植物表達(dá)載體轉(zhuǎn)入目的植物內(nèi),能提高植物的耐旱性。所述植物優(yōu)選是模式植物大豆。
有益效果
本發(fā)明公開了花生AhALDH10及其所編碼的蛋白質(zhì),該基因在花生中為首次報(bào)道。熒光定量表達(dá)分析表明該基因受鹽和旱誘導(dǎo);轉(zhuǎn)大豆功能驗(yàn)證顯示,該基因能提高甜菜堿合成量1倍左右,從而提高植株對(duì)旱脅迫的抗性。
本發(fā)明提供的AhALDH10基因是首次在花生中分離的新基因,為花生中首次報(bào)道,AhALDH10與模式作物中的ALDH10基因有80%以上的蛋白序列同源,轉(zhuǎn)大豆實(shí)驗(yàn)表明,其功能與植物耐旱相關(guān),可作為目的基因?qū)胫参?,提高植物耐旱性,以進(jìn)行植物品種改良。
附圖說明
圖1:PCR擴(kuò)增后的凝膠電泳結(jié)果
注:圖中第一道:DL2000marker;第二、三道:AhALDH10
圖2:花生與模式作物ALDH10蛋白同源比較。
注:序列從上至下:擬南芥ALDH10a8,ALDH10a9,水稻ALDH10a5,ALDH10a8,花生AhALDH10
圖3:qPCR分析AhALDH10基因在干旱和鹽脅迫(4h、8h、12h)下在花生根、葉片中的表達(dá)情況
圖4:轉(zhuǎn)基因大豆土培法耐旱性鑒定結(jié)果
注:上:AhALDH10轉(zhuǎn)基因大豆,下:對(duì)照;A處理前,B干旱處理2周,C復(fù)水1周
圖5:對(duì)照和轉(zhuǎn)基因大豆旱處理后葉片甜菜堿含量
具體實(shí)施方式
實(shí)施例1:AhALDH10基因的獲得
選用花生品種:抗旱花生品種豐花1號(hào),光照培養(yǎng)箱中萌發(fā)生長(zhǎng),待生長(zhǎng)至3葉期幼苗,取部分葉片在液氮下快速研磨成粉狀,利用RNA提取試劑盒(E.Z.N.A.TMPlant RNAKit,購自O(shè)MEGA公司)提取樣品的總RNA,并用DNAse Ⅰ進(jìn)行消化處理。利用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)總RNA的完整性,NanoDrop-2000型分光光度計(jì)檢測(cè)總RNA的濃度和純度。再通過反轉(zhuǎn)錄試劑盒將總RNA反轉(zhuǎn)合成cDNA。
根據(jù)花生轉(zhuǎn)錄組測(cè)序結(jié)果,挑選了具有完整ORF的、注釋為ALDH10基因家族的cDNA序列,根據(jù)其預(yù)測(cè)序列的5′和3′端的非編碼區(qū)分別設(shè)計(jì)了特異性引物P1、P2(表1),以上述的cDNA為模板,以94℃預(yù)變性5min;94℃變性30s,58-60℃退火30s,72℃延伸60s,35個(gè)循環(huán);72℃延伸10min為反應(yīng)條件進(jìn)行PCR擴(kuò)增。擴(kuò)增片段經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)(圖1),回收后連接到質(zhì)粒載體pGEM-T,然后轉(zhuǎn)化大腸桿菌菌株JM109感受態(tài)細(xì)胞,經(jīng)選擇性LB培養(yǎng)基(IPTG、X-gal、Amp)得到陽性克隆,菌液培養(yǎng)后測(cè)序分析。測(cè)得序列與預(yù)測(cè)序列一致,命名為AhMYB31,AhMYB31的cDNA序列如SEQ ID NO.1所示,編碼的蛋白序列如SEQ ID NO.2所示;結(jié)構(gòu)域和系統(tǒng)進(jìn)化樹分析表明與擬南芥、水稻已知的ALDH10基因有80%以上的蛋白同源(見圖2),命名為AhALDH10。
表1:說明書中涉及的引物相關(guān)信息
實(shí)施例2:AhALDH10基因的表達(dá)分析
選用花生品種:抗旱花生品種豐花1號(hào),光照培養(yǎng)箱中萌發(fā)生長(zhǎng),待生長(zhǎng)至3葉期幼苗,分別進(jìn)行干旱(20%PEG6000)及高鹽(1%NaCl)處理,分別取0h、4h、8h、12h的葉片樣品,液氮冷凍后,-80℃冰箱保存。再利用RNA提取試劑盒(E.Z.N.A.TM Plant RNAKit,購自O(shè)MEGA公司)分別提取樣品的總RNA,并反轉(zhuǎn)成cDNA。
基于AhALDH10序列設(shè)計(jì)定量引物P3、P4(表1),以花生TUA5基因引物為內(nèi)參對(duì)照,根據(jù)Real Master Mix(SYBR Green)試劑盒(TaKaRa)操作說明配制反應(yīng)體系,每個(gè)反應(yīng)3次重復(fù);反應(yīng)程序?yàn)椋?4℃變性5min;94℃變性20s,55℃退火30s,72℃延伸40s,40個(gè)循環(huán);于ABI PRISM 7000實(shí)時(shí)定量PCR儀上檢測(cè)表達(dá)量。采用2-ΔΔCT算法(Livak K J,Schmittgen T D.Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCt method.Methods,2001,25:402-408)分析試驗(yàn)結(jié)果,其中ΔΔCT=(CT樣本-CTTUA5)Time x-(CT樣本-CTTUA5)Time 0,其中CT樣本和CTTUA5分別是AhALDH10和內(nèi)參基因TUA5的CT值;Time x和Time 0分別為處理的不同時(shí)間點(diǎn)(脅迫處理4、8、12h)和對(duì)照(脅迫處理0h)。
結(jié)果如圖3所示,AhALDH10在根中表達(dá)較高,干旱處理4h該基因表達(dá)量增加了10倍,鹽脅迫4h后該基因表達(dá)量提高了5倍,可以看出該基因?qū)τ诟珊得{迫更為敏感。此外,干旱處理4h后,花生葉片甜菜堿含量從12.4μmol·g-1上升至37.1μmol·g-1,說明甜菜堿途徑參與到花生耐逆響應(yīng)中。
實(shí)施例3:轉(zhuǎn)化大豆及轉(zhuǎn)基因功能驗(yàn)證
植物表達(dá)載體采用載體pTF101(帶35S啟動(dòng)子和Bar篩選標(biāo)記)(Takara公司),利用重組試劑盒進(jìn)行載體構(gòu)建。將獲得的重組表達(dá)載體質(zhì)粒轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌EHA105感受態(tài),經(jīng)選擇性LB培養(yǎng)基(50mg/L Rif、100mg/L Kan)得到陽性克隆,菌液培養(yǎng)后通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)法轉(zhuǎn)入大豆。收獲的T0代種子分別經(jīng)除草劑及基因引物進(jìn)行陽性鑒定。獲得的陽性株系繼續(xù)種植,單株收獲。
土培法耐旱性鑒定:將T2代轉(zhuǎn)基因種子及野生型種子進(jìn)行春化處理3-4天,再用次氯酸鈉進(jìn)行消毒后,播種至營養(yǎng)缽中,正常長(zhǎng)至4葉期,用20%PEG6000進(jìn)行模擬干旱處理(陳娜等,2014,核農(nóng)學(xué)報(bào),花生中脅迫相關(guān)基因AhDHN1的克隆及非生物脅迫下表達(dá)分析),對(duì)照進(jìn)行正常澆水。2周后置換營養(yǎng)土,正常復(fù)水處理。
如圖4,對(duì)照大豆干旱2周以后,已經(jīng)基本萎蔫,復(fù)水處理后仍不能正生長(zhǎng),但轉(zhuǎn)基因大豆干旱2周以后,葉片只是略有缺水癥狀,復(fù)水以后很快很恢復(fù)正常。同時(shí)我們對(duì)各樣品大豆葉片中的甜菜堿含量也進(jìn)行了測(cè)量,見圖5,我們發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因大豆中甜菜堿含量在干旱過程中維持在一個(gè)較高的水平,比對(duì)照將近高出一倍,
綜上所述本發(fā)明人提供的AhALDH10基因是首次在花生中分離的新基因,為花生中首次報(bào)道。AhALDH10與模式作物中的ALDH10基因有80%以上的蛋白序列同源,轉(zhuǎn)大豆實(shí)驗(yàn)表明,其功能與植物耐旱相關(guān),該基因能提高甜菜堿合成量1倍左右,從而提高植株對(duì)旱脅迫的抗性。AhALDH10可作為目的基因?qū)胫参?,提高植物耐旱性,以進(jìn)行植物品種改良。
本發(fā)明涉及的序列及記號(hào)分列如下:
SEQ ID NO.1(1512bp)
ATGGAAATCCCAATCCCAACTCGACAGTTGTTCATTGACGGAGAATGGAAGCCCCCCATCCTCAGTAACAGAATTCCAATTATCAACCCTTCCACTCAGCAAGTCGTCGGGGACATTCCAGCTGCCACCAAGGAGGATGTAGACGCCGCCGTCGCCGCCGCTAGAAGAGCACTCAACCGCAACAAAGGCAACGACTGGCCTTCTGCTTCCGGCGCTCACCGAGCCCGCTATCTCCGCGCCATCGCTGCCAAGGTCGTCGAGAGAAAGGATCACCTCGCTAAGCTTGAATCCCTTGATTGCGGAAAACCACTCGATGAAGCTGCCTGGGACATGGATGATGTTGCTGGTTGCTTCGAGTTCTACGCTGACCTTGCCGAGAAACTCGACGCTAAGCAGAAGGCAACCGTTTCTCTTCCCATGGAAACTTTCAAGAGTTATGTCCTCAAAGAACCCATTGGTGTTGTTGGATTAATCACCCCATGGAACTATCCTCTGTTAATGGCTACATGGAAGGTTGCCCCTGCTCTGGCAGCTGGTTGTGCTGCGATATTGAAGCCTTCTGAATTGGCATCTGTGACATGTTTGGAGCTGGCTGACATATGCAAAGAAGTGGGCCTTCCTCCGGGTGTATTAAATATTCTCACTGGATTAGGCCCTGATGCTGGTGCTCCCTTAGCTTCCCACCCTGACGTAGACAAGATTGCCTTTACTGGAAGCTCTGCAACTGGAAGCAAGGTTATGACAGCTGCTGCACAATTAGTCAAGCCTGTCTCACTAGAGCTTGGTGGAAAAAGCCCAATCATTGTTTTTGAGGATGTTGATCTTGATAAGGCTGCTGAATGGACCCTCTTTGGTTGCTTCTGGACAAATGGTCAGATATGCAGTGCAACTTCCCGCCTTATTGTTCATGAAAGTATAGCAGCAAAATTTTTGGATACCCTTGTCAAATGGGCCAAAAACATCAAAGTTTCAGATCCCTTTGAAGAAGGTTGCAGGCTAGGCCCTGTTGTTAGTGAAGGACAGTATGAAAAAATATTGAAGTTTATCTCAAATGCTAAGAGTGAGGGCGCAACCATTTTGACTGGTGGATCTCGTCCAGAGCATCTAAAGAATGGATTTTTTATTGAACCAACCATTATAACGGATGTGACTACCTCCATGCAAATTTGGAAAGAAGAAGTATTTGGACCCGTGCTCTGTGTAAAAACATTTAGTACTGAGGAAGAGGCTCTCGATCTAGCACATGACACCATCTATGGGTTAGGAGCTGCTGTCATTTCAAATGACCTTGAAAGATGTGATCGTGTATCTAAGGCGTTTAAGGCTGGAATTGTATGGATCAATTGCTCTCAACCATGTTTTACTCAAGCCCCATGGGGAGGCACGAAACGTAGTGGTTTTGGTCGCGAATTAGGAGAATGGGGACTTGACAACTACTTGAGCGTGAAGCAAGTTACTCAGTATATCTCTAATGATCCATGGGGCTGGTACCAGTCTCCTTCAAAGCTGTGA
SEQ ID NO.2(503aa)
MEIPIPTRQLFIDGEWKPPILSNRIPIINPSTQQVVGDIPAATKEDVDAAVAAARRALNRNKGNDWPSASGAHRARYLRAIAAKVVERKDHLAKLESLDCGKPLDEAAWDMDDVAGCFEFYADLAEKLDAKQKATVSLPMETFKSYVLKEPIGVVGLITPWNYPLLMATWKVAPALAAGCAAILKPSELASVTCLELADICKEVGLPPGVLNILTGLGPDAGAPLASHPDVDKIAFTGSSATGSKVMTAAAQLVKPVSLELGGKSPIIVFEDVDLDKAAEWTLFGCFWTNGQICSATSRLIVHESIAAKFLDTLVKWAKNIKVSDPFEEGCRLGPVVSEGQYEKILKFISNAKSEGATILTGGSRPEHLKNGFFIEPTIITDVTTSMQIWKEEVFGPVLCVKTFSTEEEALDLAHDTIYGLGAAVISNDLERCDRVSKAFKAGIVWINCSQPCFTQAPWGGTKRSGFGRELGEWGLDNYLSVKQVTQYISNDPWGWYQSPSKL
SEQUENCE LISTING
<110> 江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院
<120> 調(diào)控植物耐旱性的花生AhALDH10基因及其應(yīng)用
<130> 0
<160> 8
<170> PatentIn version 3.1
<210> 1
<211> 400
<212> DNA
<213> 豐花1號(hào)
<220>
<221> 花生AhALDH10基因
<222> (1)..(400)
<223>
<400> 1
atggaaatcc caatcccaac tcgacagttg ttcattgacg gagaatggaa gccccccatc 60
ctcagtaaca gaattccaat tatcaaccct tccactcagc aagtcgtcgg ggacattcca 120
gctgccacca aggaggatgt agacgccgcc gtcgccgccg ctagaagagc actcaaccgc 180
aacaaaggca acgactggcc ttctgcttcc ggcgctcacc gagcccgcta tctccgcgcc 240
atcgctgcca aggtcgtcga gagaaaggat cacctcgcta agcttgaatc ccttgattgc 300
ggaaaaccac tcgatgaagc tgcctgggac atggatgatg ttgctggttg cttcgagttc 360
tacgctgacc ttgccgagaa actcgacgct aagcagaagg 400
<210> 2
<211> 400
<212> PRT
<213> 豐花1號(hào)
<220>
<221> 花生AhALDH10基因編碼的蛋白質(zhì)
<222> (1)..(400)
<223>
<400> 2
Met Glu Ile Pro Ile Pro Thr Arg Gln Leu Phe Ile Asp Gly Glu Trp
1 5 10 15
Lys Pro Pro Ile Leu Ser Asn Arg Ile Pro Ile Ile Asn Pro Ser Thr
20 25 30
Gln Gln Val Val Gly Asp Ile Pro Ala Ala Thr Lys Glu Asp Val Asp
35 40 45
Ala Ala Val Ala Ala Ala Arg Arg Ala Leu Asn Arg Asn Lys Gly Asn
50 55 60
Asp Trp Pro Ser Ala Ser Gly Ala His Arg Ala Arg Tyr Leu Arg Ala
65 70 75 80
Ile Ala Ala Lys Val Val Glu Arg Lys Asp His Leu Ala Lys Leu Glu
85 90 95
Ser Leu Asp Cys Gly Lys Pro Leu Asp Glu Ala Ala Trp Asp Met Asp
100 105 110
Asp Val Ala Gly Cys Phe Glu Phe Tyr Ala Asp Leu Ala Glu Lys Leu
115 120 125
Asp Ala Lys Gln Lys Ala Thr Val Ser Leu Pro Met Glu Thr Phe Lys
130 135 140
Ser Tyr Val Leu Lys Glu Pro Ile Gly Val Val Gly Leu Ile Thr Pro
145 150 155 160
Trp Asn Tyr Pro Leu Leu Met Ala Thr Trp Lys Val Ala Pro Ala Leu
165 170 175
Ala Ala Gly Cys Ala Ala Ile Leu Lys Pro Ser Glu Leu Ala Ser Val
180 185 190
Thr Cys Leu Glu Leu Ala Asp Ile Cys Lys Glu Val Gly Leu Pro Pro
195 200 205
Gly Val Leu Asn Ile Leu Thr Gly Leu Gly Pro Asp Ala Gly Ala Pro
210 215 220
Leu Ala Ser His Pro Asp Val Asp Lys Ile Ala Phe Thr Gly Ser Ser
225 230 235 240
Ala Thr Gly Ser Lys Val Met Thr Ala Ala Ala Gln Leu Val Lys Pro
245 250 255
Val Ser Leu Glu Leu Gly Gly Lys Ser Pro Ile Ile Val Phe Glu Asp
260 265 270
Val Asp Leu Asp Lys Ala Ala Glu Trp Thr Leu Phe Gly Cys Phe Trp
275 280 285
Thr Asn Gly Gln Ile Cys Ser Ala Thr Ser Arg Leu Ile Val His Glu
290 295 300
Ser Ile Ala Ala Lys Phe Leu Asp Thr Leu Val Lys Trp Ala Lys Asn
305 310 315 320
Ile Lys Val Ser Asp Pro Phe Glu Glu Gly Cys Arg Leu Gly Pro Val
325 330 335
Val Ser Glu Gly Gln Tyr Glu Lys Ile Leu Lys Phe Ile Ser Asn Ala
340 345 350
Lys Ser Glu Gly Ala Thr Ile Leu Thr Gly Gly Ser Arg Pro Glu His
355 360 365
Leu Lys Asn Gly Phe Phe Ile Glu Pro Thr Ile Ile Thr Asp Val Thr
370 375 380
Thr Ser Met Gln Ile Trp Lys Glu Glu Val Phe Gly Pro Val Leu Cys
385 390 395 400
<210> 3
<211> 22
<212> DNA
<213>
<220>
<221> P1
<222> (1)..(22)
<223>
<400> 3
atggaaatcc caatcccaac tc 22
<210> 4
<211> 25
<212> DNA
<213>
<220>
<221> P2
<222> (1)..(25)
<223>
<400> 4
tcacagcttt gaaggagact ggtac 25
<210> 5
<211> 22
<212> DNA
<213>
<220>
<221> P3
<222> (1)..(22)
<223>
<400> 5
ttgcttcgag ttctacgctg ac 22
<210> 6
<211> 22
<212> DNA
<213>
<220>
<221> P4
<222> (1)..(22)
<223>
<400> 6
acaccaatgg gttctttgag ga 22
<210> 7
<211> 21
<212> DNA
<213>
<220>
<221> TUA5-F
<222> (1)..(21)
<223>
<400> 7
ctgatgtcgc tgtgctcttg g 21
<210> 8
<211> 23
<212> DNA
<213>
<220>
<221> TUA5-R
<222> (1)..(23)
<223>
<400> 8
ctgttgaggt tggtgtaggt agg 23