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一種重組蛋白的編碼序列、重組蛋白及其單克隆抗體的制備方法與流程

文檔序號(hào):12644769閱讀:995來源:國知局

本發(fā)明屬于生物技術(shù)領(lǐng)域。具體而言,本發(fā)明涉及一種重組蛋白的編碼序列、重組蛋白及其單克隆抗體的制備方法。



背景技術(shù):

標(biāo)簽蛋白抗體(Tag-antibody)是一類經(jīng)過親和純化的小鼠單克隆抗體。用于檢測各種商品化表達(dá)載體上的標(biāo)簽序列(如:MyC、His、GST、HA等),籍以分析檢驗(yàn)?zāi)康牡鞍椎谋磉_(dá)含量及其功能。其原理是抗原-抗體反應(yīng),這些標(biāo)簽抗體可以高度特異地結(jié)合對(duì)應(yīng)的標(biāo)簽融合蛋白。標(biāo)簽抗體是開展基因蛋白表達(dá)、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和基因功能研究的常用工具。

常規(guī)的標(biāo)簽蛋白單克隆抗體制備所使用的免疫原是基因工程技術(shù)表達(dá)的完整蛋白,但由于堿基密碼子的緣故,該蛋白在大腸桿菌中表達(dá)困難,表達(dá)量極低,導(dǎo)致后續(xù)的純化工作難以開展,嚴(yán)重阻礙其單克隆抗體的制備。另外,標(biāo)簽蛋白種類繁多,每種標(biāo)簽蛋白單獨(dú)制備,耗時(shí)長、成本高,不利于市場的廣泛推廣和使用。



技術(shù)實(shí)現(xiàn)要素:

本發(fā)明旨在避免背景技術(shù)中的不足之處,通過設(shè)計(jì)一種重組蛋白并制備其單克隆抗體,從而實(shí)現(xiàn)同時(shí)制備多種標(biāo)簽蛋白單克隆抗體,既增強(qiáng)了檢測靈敏度,又可以同時(shí)制備多種抗體。

為了達(dá)到上述目的,本發(fā)明提供的技術(shù)方案為:

所述重組蛋白的編碼序列如SEQ ID NO.1所示。

所述重組蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示。

所述重組蛋白表達(dá)載體是含有SEQ ID NO.1所示編碼序列的質(zhì)粒載體。

上述重組蛋白和重組蛋白表達(dá)載體可用于制備標(biāo)簽蛋白單克隆抗體。

所述標(biāo)簽蛋白單克隆抗體的制備方法包括如下步驟:

(1)合成SEQ ID NO.1所示的重組蛋白編碼序列,并將該重組蛋白編碼序列連接質(zhì)粒載體,進(jìn)而構(gòu)建重組蛋白表達(dá)載體;

(2)將重組蛋白表達(dá)載體轉(zhuǎn)化大腸桿菌,篩選得到重組蛋白表達(dá)菌株;

(3)將重組蛋白表達(dá)菌株大規(guī)模培養(yǎng)后,經(jīng)純化獲取重組蛋白,所述重組蛋白的氨基酸序列如SEQ ID NO.2所示;

(4)將重組蛋白多次免疫Balb/c小鼠,取小鼠脾臟細(xì)胞與sp2/0骨髓瘤細(xì)胞融合,經(jīng)過多輪篩選和多指標(biāo)鑒定分別獲得針對(duì)重組蛋白所對(duì)應(yīng)的標(biāo)簽蛋白單克隆細(xì)胞株,再由標(biāo)簽蛋白單克隆細(xì)胞株制得標(biāo)簽蛋白單克隆抗體。

下面對(duì)本發(fā)明作進(jìn)一步說明:

本發(fā)明首先以4種標(biāo)簽結(jié)合蛋白(6xHis、S Tag、Trx和GST)為靶抗原,序列比較結(jié)果顯示所選擇的該抗原表位與其它蛋白序列無明顯同源性。

其次,為了促進(jìn)所選擇抗原表位對(duì)BALB/c小鼠免疫系統(tǒng)的刺激,增強(qiáng)免疫效果,故分別將所選擇的四個(gè)優(yōu)勢抗原表位序列重復(fù)后通過柔性片段(連續(xù)四個(gè)甘氨酸)連接,形成重組蛋白氨基酸序列。

第三步,采用大腸桿菌偏愛密碼子,將重組蛋白氨基酸序列轉(zhuǎn)換為對(duì)應(yīng)的核苷酸序列,以利于重組蛋白在大腸桿菌中的表達(dá)以提高表達(dá)量。

第四步,化學(xué)合成上一步驟得到的核苷酸序列,并通過酶切連接,將合成得到的核苷酸片段插入表達(dá)載體PET-28a(+),構(gòu)建重組蛋白表達(dá)載體。

第五步,重組蛋白表達(dá)載體轉(zhuǎn)化大腸桿菌ER2566感受態(tài)細(xì)胞,篩選得到重組蛋白表達(dá)菌株。

第六步,重組蛋白表達(dá)菌株大規(guī)模培養(yǎng)后,超聲破菌并低溫離心后,取溶液上清通過鎳瓊脂糖親和層析柱親和層析,洗脫得到純化重組蛋白。

第七步,純化后的重組蛋白多次免疫BALB/c小鼠后,取其脾臟細(xì)胞與sp2/0骨髓瘤細(xì)胞融合,經(jīng)過多輪篩選并最終分別得到雜交瘤細(xì)胞株。

第八步,將雜交瘤細(xì)胞株分別制備BALB/c小鼠腹水,使用辛酸-硫酸銨法及Protein G分兩步純化單克隆抗體。

與現(xiàn)有技術(shù)相比,本發(fā)明的有益效果為:

一是通過分子生物學(xué)技術(shù),實(shí)現(xiàn)了四種標(biāo)簽結(jié)合蛋白抗原表位的重復(fù)及串聯(lián)表達(dá),增強(qiáng)目的抗原表位對(duì)小鼠免疫系統(tǒng)的刺激,排除了無關(guān)序列可能帶來的干擾;

二是作為免疫原的重組蛋白僅含有四種標(biāo)簽蛋白抗原表位,保證了最終得到的單克隆抗體僅特異性識(shí)別該四種標(biāo)簽蛋白,并篩選同時(shí)得到四種標(biāo)簽蛋白,提高了檢測的靈敏度,降低實(shí)驗(yàn)成本。

三是采用大腸桿菌偏愛密碼子優(yōu)化重組蛋白對(duì)應(yīng)的核苷酸序列,從而大大提高了重組蛋白在大腸桿菌中的表達(dá)水平。

具體實(shí)施方式

一、4種標(biāo)簽蛋白抗原表位選擇

以4種標(biāo)簽蛋白為靶抗原,利用生物軟件DNAssist2.0分析其抗原表位序列的親水性及抗原性,分別選擇6xHis、S Tag、Trx和GST抗原表位A、B、C和D。同時(shí),序列比較結(jié)果表明所選擇的A、B、C和D抗原表位序列特異性高,與其它蛋白序列無明顯同源性。

二、4種標(biāo)簽蛋白抗原表位的串聯(lián)

為增強(qiáng)所選擇抗原表位對(duì)小鼠免疫系統(tǒng)的刺激以利于后續(xù)實(shí)驗(yàn)的進(jìn)行,將標(biāo)簽蛋白A、B、C和D四種抗原表位序列分別通過柔性片段(連續(xù)四個(gè)甘氨酸)連接,得到重組蛋白氨基酸序列,其具體序列如序列表SEQ ID N0.2所示。

三、優(yōu)化編碼重組蛋白的核苷酸序列

為了提高重組蛋白在大腸桿菌中的表達(dá)量,在重組蛋白氨基酸序列不變的前提下,根據(jù)大腸桿菌偏愛密碼子將編碼重組蛋白的氨基酸序列轉(zhuǎn)化為對(duì)應(yīng)的核苷酸序列,具體序列如序列表SEQ ID NO.1所示,并在其上下游分別添加酶切位點(diǎn)BamHI和EcoRI對(duì)應(yīng)的核苷酸序列后,由杭州賢至生物科技有限公司合成。合成后的目的基因克隆于pMD19-T載體(寶生物工程大連有限公司)中。

四、構(gòu)建重組蛋白表達(dá)載體

用限制性內(nèi)切酶BamHI和EcoRI(寶生物工程大連有限公司)于37℃分別雙酶切含目的基因的pMD19-T載體和PET-28a(+)載體(德國Novagen公司)12小時(shí),酶切產(chǎn)物分別行1%瓊脂糖凝膠電泳,并分別切膠回收目的基因和PET-28a(+)載體(本發(fā)明所使用的膠回收試劑盒均來自寧波中鼎生物技術(shù)有限公司)。使用T4連接酶(寶生物工程大連有限公司)將回收的目的基因和PET-28a(+)載體按一定的比例于4℃連接12小時(shí)后,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞(杭州賢至生物科技有限公司),并涂布于含卡那青霉素抗性(50μg/mL)的LB平板,于37℃恒溫培養(yǎng)12小時(shí)之后,于平板上挑取單克隆菌株至含卡那青霉素抗性(50μg/mL)的LB液體培養(yǎng)基,37℃恒溫?fù)u床培養(yǎng)12小時(shí)后,采用質(zhì)粒純化試劑盒(本發(fā)明所使用的質(zhì)粒純化試劑盒均來自于寧波中鼎生物技術(shù)有限公司)提取質(zhì)粒,經(jīng)BamHI和EcoRI雙酶切鑒定后得到正確的重組表達(dá)載體。

五、構(gòu)建重組蛋白E表達(dá)菌株

將構(gòu)建好的重組表達(dá)載體轉(zhuǎn)化E.coli ER2566感受態(tài)細(xì)胞,并涂布于含卡那青霉素抗性(50μg/mL)的LB平板,于37℃過夜培養(yǎng)。第二日,挑取平板上單克隆菌株至含卡那青霉素抗性(50μg/mL)的LB液體培養(yǎng)基,37℃恒溫?fù)u床培養(yǎng)8小時(shí)后,加誘導(dǎo)劑異丙基硫代-β-D-半乳糖苷(終濃度為1.0mmol/L)誘導(dǎo)表達(dá)4個(gè)小時(shí)后制備蛋白電泳樣品。13.5%聚丙烯酰胺凝膠電泳結(jié)果表明重組蛋白成功表達(dá),得到重組蛋白表達(dá)菌株。

六、純化重組蛋白F

接種重組蛋白表達(dá)菌株至LB液體培養(yǎng)基,加卡那青霉素至終濃度為50μg/mL,37℃恒溫?fù)u床培養(yǎng)8小時(shí)后,用含50μg/mL卡那青霉素的LB液體培養(yǎng)基將該菌按1:100比例稀釋后,分裝至細(xì)菌培養(yǎng)瓶中,置37℃恒溫?fù)u床培養(yǎng)至OD600=0.8,加誘導(dǎo)劑異丙基硫代-β-D-半乳糖苷至終濃度為1.0mmol/L,繼續(xù)培養(yǎng)誘導(dǎo)4小時(shí)。離心收集菌體后,低溫超聲破菌,低溫離心后取上清通過鎳瓊脂糖親和層析柱,經(jīng)洗滌、洗脫最終得到純化重組蛋白。

七、構(gòu)建用于檢測的偶聯(lián)蛋白

將標(biāo)簽蛋白A、B兩個(gè)抗原表位序列分別在N端連接一個(gè)半胱氨酸,合成G、H序列多肽,載體蛋白選擇BSA(Roche公司),用SPDP(PIERCE公司)連接法將合成的多肽分別與BSA偶聯(lián):4.6mg SPDP溶解740ul DMSO,終濃度為20mM。0.1008g BSA溶解于2ml PBS-EDTA溶液中,室溫靜置1h。HiTrapTM Deaslting column脫鹽柱洗脫多余的SPDP。4mg多肽加入偶聯(lián)好的BSA-SPDP體系中室溫過夜,得到產(chǎn)物BSA-G、BSA-H(由杭州賢至生物科技有限公司合成)。將蛋白GST和TRX(購買于杭州畢肯萊博生物科技有限公司)命名為I、L。

八、雜交瘤細(xì)胞株的獲得

取5-7周齡雌性BALB/c小鼠,基礎(chǔ)免疫每只小鼠皮下多點(diǎn)注射福氏完全佐劑乳化的70μg重組蛋白;15天后進(jìn)行加強(qiáng)免疫,方法為取相同量的重組蛋白用福氏不完全佐劑乳化后,皮下多點(diǎn)注射;第三次加強(qiáng)免疫在15天以后,方法同第二次相同。30天后,取120μg重組蛋白腹腔加強(qiáng)注射,并于腹腔加強(qiáng)注射72小時(shí)后,眼眶取血,并處死小鼠,取其脾臟制備細(xì)胞懸液,細(xì)胞計(jì)數(shù),按1/5于脾細(xì)胞的數(shù)量取生長狀態(tài)良好的sp2/0小鼠骨髓瘤細(xì)胞,混和離心后,加入聚乙二醇(PEG-4000)使二者融合。另外,再加入等體積的飼養(yǎng)細(xì)胞,混勻后分置于96孔細(xì)胞板(200μL/孔),于5%二氧化碳培養(yǎng)箱培養(yǎng)。5天后,半保留換液,10天后采用間接酶聯(lián)免疫吸附法檢測96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中的雜交瘤細(xì)胞培養(yǎng)上清。

具體方法如下:

蛋白BSA-G、BSA-H、I、L分別通過包被液稀釋后(終濃度為1μg/mL),以100μL/孔加入酶標(biāo)板(深圳金燦華實(shí)業(yè)有限公司),4℃包被12小時(shí)后用洗滌液洗滌一次并拍干;加入封閉液,150μL/孔,37℃封閉2小時(shí),棄孔內(nèi)液體,拍干;分別加待檢細(xì)胞培養(yǎng)上清及對(duì)照血清, 100μL/孔,37℃孵育1小時(shí)后,洗滌液洗滌三次并拍干;加HRP(辣根過氧化物酶)標(biāo)記的羊抗鼠IgG,100μL/孔,37℃孵育30分鐘后,洗滌液洗滌四次并拍干;每孔加顯色液A和顯色液B各50μL,37℃避光顯色10分鐘后,加終止液終止反應(yīng),50μL/孔,酶標(biāo)儀450nm波長空白孔校零后讀取OD值。以免疫小鼠的血清作為陽性對(duì)照,相關(guān)溶液配方如下:

包被液:Na2CO3 1.5g,NaHCO3 2.9g, 加雙蒸水定容至1000mL(pH9.6)。

封閉液:Na2HPO4.12H2O 2.68g, NaH2PO4.2H2O 0.39g, NaCl 8.5g,20g牛血清白蛋白,加雙蒸水定容至1000mL(pH7.4)。

洗滌液:Na2HPO4.12H2O 2.68g, NaH2PO4.2H2O 0.39g, NaCl 8.5g,Tween-20 0.5mL,加雙蒸水定容至1000mL(pH7.4)。

顯色液A: 200mg TMB 溶于100mL無水乙醇,加雙蒸水定容至1000mL。

顯色液B: 檸檬酸2.1g,Na2HPO4.12H2O 71g,加雙蒸水定容至1000mL。

使用時(shí):1mL顯色液A+1mL顯色液B+0.4μL 30%H2O2

終止液:2M H2SO4, 21.7mL濃H2SO4加雙蒸水定容至1000mL。

對(duì)于檢測陽性的雜交瘤細(xì)胞克隆,再使用有限稀釋法進(jìn)行亞克隆。經(jīng)過三次亞克隆,分別篩選得到6xHis 3株雜交瘤細(xì)胞株(1F4、8B6、3D7、),S Tag 2株雜交瘤細(xì)胞株(5D6、2C3);Trx 5株雜交瘤細(xì)胞株(4F4、6B7、3G7、6T5、7H5);GST3株雜交瘤細(xì)胞株(7F4、2C7、6D7)。

最后將雜交瘤細(xì)胞株分別制備BALB/c小鼠腹水,使用辛酸-硫酸銨法及Protein G分兩步純化單克隆抗體。

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