專利名稱:小麥花藥愈傷組織基因槍遺傳轉(zhuǎn)化方法
技術(shù)領(lǐng)域:
本發(fā)明屬于農(nóng)業(yè)生物技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種小麥花藥愈傷組織基因槍遺傳轉(zhuǎn)化
方法。
背景技術(shù):
小麥?zhǔn)侵匾募Z食作物之一,自1992年Vasil等將GUS/Bar基因?qū)胄←湯@得首 例轉(zhuǎn)基因小麥以來,轉(zhuǎn)基因小麥研究有了長足的發(fā)展,小麥轉(zhuǎn)基因的常用方法為基因槍法 (microprojectilebombardment)、花粉管通道法(polly tube pathway)禾口農(nóng)桿菌介導(dǎo)法 (Agrobacterium mediated transformation)。由于小麥不是農(nóng)桿菌的天然宿主及禾谷類 植物沒有損傷反應(yīng)現(xiàn)象,所以基因槍轉(zhuǎn)化一直是小麥遺傳轉(zhuǎn)化的主要方法,盡管小麥遺傳 轉(zhuǎn)化的方法不少,但各種方法的轉(zhuǎn)基因效率很低,一個重要的原因是轉(zhuǎn)化方法不成熟?;?槍轉(zhuǎn)化的受體多為幼胚、成熟胚及其體細(xì)胞愈傷組織,但這些受體在基因槍轟擊后再生率 低已成為一個限制因子,同時,經(jīng)基因槍轉(zhuǎn)化體細(xì)胞獲得的轉(zhuǎn)基因株是一個外源基因雜合 體,須經(jīng)再自交2代才能選出轉(zhuǎn)化基因完全純合的個體,育種程序復(fù)雜。離體培養(yǎng)中花藥愈 傷組織高頻率的再生特性及當(dāng)代加倍純合特點(diǎn)已引起了人們的重視,利用花藥愈傷組織進(jìn) 行遺傳轉(zhuǎn)化,不僅愈傷組織再生特性好,而且再生苗直接加倍后即可成為基因型完全純合 的穩(wěn)定雙倍體。
發(fā)明內(nèi)容
針對上述現(xiàn)有技術(shù)存在的缺陷或不足,本發(fā)明的目的在于,提供一種小麥花藥愈 傷組織基因槍轉(zhuǎn)化方法,該方法利用小麥花藥愈傷組織再生頻率高、再生株加倍即為純合 二倍體的特點(diǎn),通過基因槍轟擊、小麥花藥愈傷組織再生與再生株染色體加倍,快速、高效 地進(jìn)行小麥遺傳轉(zhuǎn)化,克服了傳統(tǒng)的小麥體細(xì)胞遺傳轉(zhuǎn)化中,體細(xì)胞愈傷組織再生特性差、 遺傳轉(zhuǎn)化效率低的缺陷。 為實(shí)現(xiàn)上述目的,本發(fā)明采用如下的技術(shù)方案 —種小麥花藥愈傷組織基因槍遺傳轉(zhuǎn)化方法,包括以下步驟 1)小麥花藥愈傷組織誘導(dǎo)選取小麥花粉細(xì)胞發(fā)育至單核中期到單核晚期的小 麥幼穗,在2°C 4t:條件下低溫放置2天; 低溫放置后的小麥幼穗經(jīng)常規(guī)消毒后,剝?nèi)』ㄋ幗M織接種在花藥愈傷組織誘導(dǎo)培 養(yǎng)基上,于25°C 27t:條件下遮光培養(yǎng)誘導(dǎo)小麥花藥愈傷組織; 所述的小麥花藥愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基以通用培養(yǎng)基W14為基準(zhǔn),添加以下物 質(zhì)2,4-二氯苯氧乙酸(2, 4-D) :2. 0mg/L,酪蛋白500mg/L,生物素0. 5mg/L,蔗糖 100000mg/L,瓊脂粉5000mg/L ; 調(diào)整花藥愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基的pH值為5.6,置于高壓滅菌鍋(壓力1.0kg/cm2) 滅菌20分鐘; 2)高滲培養(yǎng)小麥花藥組織誘導(dǎo)培養(yǎng)40天后陸續(xù)產(chǎn)生花藥愈傷組織,分批挑選小
3米粒大小、顏色、質(zhì)地一致的花藥愈傷組織轉(zhuǎn)移到高滲培養(yǎng)基中培養(yǎng)5h ;所述的高滲培養(yǎng)
基為愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基再附加0. 2mol/L甘露醇和0. 2mol/L山梨醇;
3)基因槍轟擊轉(zhuǎn)化經(jīng)高滲培養(yǎng)后的花藥愈傷組織用常規(guī)的基因槍轉(zhuǎn)化方法 進(jìn)行轟擊轉(zhuǎn)化,基因槍轟擊參數(shù)為金粉直徑l.Oym,阻擋網(wǎng)與轟擊材料之間的距離為 6. 0cm,可裂膜壓力為1100Pa,每槍金粉/DNA用量為1 y g/60 y g,每皿材料轟擊1次;
4)恢復(fù)培養(yǎng)基因槍轟擊后的花藥愈傷組織在上述高滲培養(yǎng)基上繼續(xù)培養(yǎng)8h,然 后轉(zhuǎn)移到小麥花藥愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基上恢復(fù)培養(yǎng)6h ; 5)分化篩選培養(yǎng)恢復(fù)培養(yǎng)6h后的花藥愈傷組織轉(zhuǎn)至分化篩選培養(yǎng)基上進(jìn)行光 照分化篩選培養(yǎng);培養(yǎng)溫度為25 28t:,光照度30001x,每天光照12h ;
所述的分化篩選培養(yǎng)基選用通用培養(yǎng)基W14,以通用培養(yǎng)基W14為基準(zhǔn),添加以下 物質(zhì)6-呋喃基氨基嘌呤(KT) :2.0mg/L, a-奈乙酸(NAA) :0. lmg/L,酪蛋白500mg/L,生 物素0. 5mg/L,蔗糖30000mg/L,瓊脂粉5000mg/L ; 調(diào)整分化篩選培養(yǎng)基的pH值為5.6,置于高壓滅菌鍋(壓力1.0kg/cm2)滅菌20
分鐘;經(jīng)基因槍轟擊、恢復(fù)生長的花藥愈傷組織在分化篩選培養(yǎng)基上分化出芽苗。 6)壯苗、生根培養(yǎng)待花藥愈傷組織分化的芽苗長至2 3片葉時轉(zhuǎn)移到生根、壯
苗培養(yǎng)基上,于25°C 、3000Lx光照條件下進(jìn)行壯苗、生根培養(yǎng); 所述的壯苗、生根培養(yǎng)基選用通用培養(yǎng)基W14,以通用培養(yǎng)基W14為基準(zhǔn),W14通 用培養(yǎng)的無機(jī)鹽濃度降低一半,添加a _奈乙酸(NAA)O. 5mg/L,蔗糖30000mg/L,瓊脂粉 5000mg/L ; 調(diào)整壯苗、生根培養(yǎng)基的pH值為5.6,置于高壓滅菌鍋(壓力1.0kg/cm2)滅菌20 分鐘; 7)染色體加倍在壯苗、生根培養(yǎng)基上根、苗生長健壯的花粉植株及時移栽到營 養(yǎng)缽中,于15°C 、 1500Lx光照條件下緩苗,待完全緩苗且進(jìn)一步生長10天后,用含0. 05%的 秋水仙素和1. 5%的二甲基亞砜的染色體加倍液注射分蘗節(jié),對花粉植株進(jìn)行染色體加倍, 注射在清晨8 10時進(jìn)行,共3次,每隔一天注射1次,每次用量25 ii L,花粉植株經(jīng)染色體 加倍后得到加倍純合個體; 8)分子檢測并篩選用常規(guī)的分子檢測技術(shù)對加倍純合個體進(jìn)行分子檢測,篩選 穩(wěn)定的轉(zhuǎn)基因純合株。 本發(fā)明的小麥花藥愈傷組織基因槍遺傳轉(zhuǎn)化方法與傳統(tǒng)的體細(xì)胞愈傷組織基因 搶轉(zhuǎn)化相比,本發(fā)明的基因槍轟擊后的花藥愈傷組織再生頻率高,再生株經(jīng)染色體加倍后 可直接獲得轉(zhuǎn)基因純合穩(wěn)定株,克服了傳統(tǒng)的體細(xì)胞愈傷組織基因搶轉(zhuǎn)化中,愈傷組織再 生頻率低、轉(zhuǎn)化株基因雜合,須經(jīng)自交2代選擇純合體的技術(shù)弊端,提高了小麥遺傳轉(zhuǎn)化和 分子育種效率,轉(zhuǎn)化效率達(dá)8%以上。
圖1基因槍轟擊后的花藥愈傷組織高頻率再生
圖2經(jīng)RT-PCR檢測的花藥愈傷組織轉(zhuǎn)基因再生植株
以下結(jié)合具體實(shí)施方式
對本發(fā)明做進(jìn)一步的詳細(xì)說明。
具體實(shí)施例方式
—、具體實(shí)施例 實(shí)施例1 : 本發(fā)明的小麥花藥愈傷組織基因槍遺傳轉(zhuǎn)化方法,包括以下步驟 1)小麥花藥愈傷組織誘導(dǎo)選取小麥花粉細(xì)胞發(fā)育至單核中期到單核晚期的小
麥幼穗,在2t:條件下低溫放置2天; 低溫放置后的小麥幼穗經(jīng)常規(guī)消毒后,剝?nèi)』ㄋ幗M織接種在花藥愈傷組織誘導(dǎo)培
養(yǎng)基上,于25t:條件下遮光培養(yǎng)誘導(dǎo)小麥花藥愈傷組織; 小麥花藥愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基是以通用培養(yǎng)基W14為基準(zhǔn),添加以下物質(zhì)2, 4-二氯苯氧乙酸(2,4-D) :2. 0mg/L,酪蛋白:500mg/L,生物素0. 5mg/L,蔗糖100000mg/ L,瓊脂粉:5000mg/L ; 調(diào)整花藥愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基的pH值為5.6,置于高壓滅菌鍋(壓力1.0kg/cm2) 滅菌20分鐘。 通用培養(yǎng)基W14的配方為硝酸鉀(KN03) :2000mg/L,磷酸二氫氨(NH4H2P04): 380mg/L,氯化牽丐(CaC12 2H20) :140mg/L,硫酸鎂(MgS04 7H20) :200mg/L,硫酸鉀 (K2S04) :700mg/L,硫酸亞鐵(FeS04 7H20) :27. 8mg/L,乙二酸四乙鈉(Na2EDTA) :37. 3mg/ L,硫酸錳(MnS04 4H20) :8mg/L,硫酸鋅(ZnS04 7H20) :3. Omg/L,硼酸(H3B03) :3. Omg/ L,碘化鉀(KI) :0. 5mg/L,鉬酸鈉(Na2Mo04 2H20) :0. 005mg/L,硫酸銅(CuS04 5H20): 0. 025mg/L,氯化鈷(CoC12 6H20) :0. 025mg/L,鹽酸硫胺素2mg/L,鹽酸吡哆鋅0. 5mg/L, 煙酸0. 5mg/L,甘氨酸:2mg/L ; 2)高滲培養(yǎng)小麥花藥組織誘導(dǎo)培養(yǎng)40天后陸續(xù)產(chǎn)生花藥愈傷組織,分批挑選小 米粒大小、顏色、質(zhì)地一致的花藥愈傷組織轉(zhuǎn)移到高滲培養(yǎng)基中培養(yǎng)5h ;高滲培養(yǎng)基為愈 傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基再附加0. 2mol/L甘露醇和0. 2mol/L山梨醇; 3)基因槍轟擊轉(zhuǎn)化經(jīng)高滲培養(yǎng)后的花藥愈傷組織用常規(guī)的基因槍轉(zhuǎn)化方法 進(jìn)行轟擊轉(zhuǎn)化,基因槍轟擊參數(shù)為金粉直徑l.Oym,阻擋網(wǎng)與轟擊材料之間的距離為 6. Ocm,可裂膜壓力為1100Pa,每槍金粉/DNA用量為1 y g/60 y g,每皿材料轟擊1次;
4)恢復(fù)培養(yǎng)基因槍轟擊后的花藥愈傷組織在上述高滲培養(yǎng)基上繼續(xù)培養(yǎng)8h,然 后轉(zhuǎn)移到小麥花藥愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基上恢復(fù)培養(yǎng)6h ; 5)分化篩選培養(yǎng)恢復(fù)培養(yǎng)6h后的花藥愈傷組織轉(zhuǎn)至分化篩選培養(yǎng)基上進(jìn)行光 照分化培養(yǎng);培養(yǎng)溫度為2『C,光照度30001x,每天光照12h ; 分化篩選培養(yǎng)基選用通用培養(yǎng)基W14,以通用培養(yǎng)基W14為基準(zhǔn),添加以下物質(zhì) 6-呋喃基氨基嘌呤(KT) :2.0mg/L, a-奈乙酸(NAA) :0. lmg/L,酪蛋白500mg/L,生物素: 0. 5mg/L,蔗糖30000mg/L,瓊脂粉5000mg/L ; 調(diào)整分化篩選培養(yǎng)基的pH值為5. 6,置于高壓滅菌鍋(壓力1. 0kg/cm2)滅菌20
分鐘;經(jīng)基因槍轟擊、恢復(fù)生長的花藥愈傷組織在分化篩選培養(yǎng)基上分化出芽苗。 6)壯苗、生根培養(yǎng)待花藥愈傷組織分化的芽苗長至2 3片葉時轉(zhuǎn)移到生根、壯
苗培養(yǎng)基上,于25°C 、3000Lx光照條件下進(jìn)行壯苗、生根培養(yǎng); 壯苗、生根培養(yǎng)基以通用培養(yǎng)基W14為基準(zhǔn),將W14通用培養(yǎng)的無機(jī)鹽濃度降低一 半,添加a —奈乙酸(NAA)O. 5mg/L,蔗糖30000mg/L,瓊脂粉:5000mg/L ;
調(diào)整壯苗、生根培養(yǎng)基的pH值為5. 6,置于高壓滅菌鍋滅菌20分鐘(1. 0kg/cm2);
7)染色體加倍在壯苗、生根培養(yǎng)基上根、苗生長健壯的花粉植株及時移栽到營 養(yǎng)缽中,于15°C 、 1500Lx光照條件下緩苗,待完全緩苗且進(jìn)一步生長10天后,用含0. 05%的 秋水仙素和1. 5%的二甲基亞砜的染色體加倍液注射分蘗節(jié),對花粉植株進(jìn)行染色體加倍, 注射在清晨8 10時進(jìn)行,共3次,每隔一天注射1次,每次用量25 ii L,花粉植株經(jīng)染色體 加倍后得到加倍純合個體; 8)分子檢測并篩選用常規(guī)的分子檢測技術(shù)對加倍純合個體進(jìn)行分子檢測,篩選 穩(wěn)定的轉(zhuǎn)基因純合株。 實(shí)施例2 :本實(shí)施例與實(shí)施例1的步驟相同,區(qū)別在于本實(shí)施例的步驟1)中低溫
放置的溫度為4t:,低溫放置后的小麥幼穗于27t:條件下遮光培養(yǎng)誘導(dǎo)小麥花藥愈傷組
織;步驟5)中分化篩選培養(yǎng)溫度為25°C。 實(shí)施例3 :本實(shí)施例與實(shí)施例1的步驟相同,區(qū)別在于本實(shí)施例的步驟1)中低溫
放置的溫度為2t:,低溫放置后的小麥幼穗于26t:條件下遮光培養(yǎng)誘導(dǎo)小麥花藥愈傷組
織;步驟5)中分化篩選培養(yǎng)溫度為27°C。
二、本發(fā)明的方法的試驗(yàn)研究及結(jié)果 發(fā)明人于2008年以普通小麥小偃22X西農(nóng)213、花育888X西農(nóng)213及矮敗X 小偃22三個雜交組合的巳代為材料,經(jīng)巳代花藥組織離體培養(yǎng)誘導(dǎo)愈傷組織,選取質(zhì)地致 密的180塊花藥愈傷組織用本發(fā)明的方法進(jìn)行基因槍轟擊轉(zhuǎn)化,經(jīng)恢復(fù)培養(yǎng)與再生,獲得 了 69個再生苗,經(jīng)RT-PCR檢測,獲15個轉(zhuǎn)基因陽性植株,轉(zhuǎn)化效率達(dá)8. 3% 。
權(quán)利要求
一種小麥花藥愈傷組織基因槍遺傳轉(zhuǎn)化方法,其特征在于,包括以下步驟1)小麥花藥愈傷組織誘導(dǎo)選取小麥花粉細(xì)胞發(fā)育至單核中期到單核晚期的小麥幼穗,在2℃~4℃條件下低溫放置2天;低溫放置后的小麥幼穗經(jīng)常規(guī)消毒后,剝?nèi)』ㄋ幗M織接種在花藥愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基上,于25℃~27℃條件下遮光培養(yǎng)誘導(dǎo)小麥花藥愈傷組織;所述的小麥花藥愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基以通用培養(yǎng)基W14為基準(zhǔn),添加以下物質(zhì)2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-D)2.0mg/L,酪蛋白500mg/L,生物素0.5mg/L,蔗糖100000mg/L,瓊脂粉5000mg/L;調(diào)整花藥愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基的pH值為5.6,置于高壓滅菌鍋滅菌20分鐘;2)高滲培養(yǎng)小麥花藥組織誘導(dǎo)培養(yǎng)40天后陸續(xù)產(chǎn)生花藥愈傷組織,分批挑選小米粒大小、顏色、質(zhì)地一致的花藥愈傷組織轉(zhuǎn)移到高滲培養(yǎng)基中培養(yǎng)5h;所述的高滲培養(yǎng)基為愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基再附加0.2mol/L甘露醇和0.2mol/L山梨醇;3)基因槍轟擊轉(zhuǎn)化經(jīng)高滲培養(yǎng)后的花藥愈傷組織用常規(guī)的基因槍轉(zhuǎn)化方法進(jìn)行轟擊轉(zhuǎn)化,基因槍轟擊參數(shù)為金粉直徑1.0μm,阻擋網(wǎng)與轟擊材料之間的距離為6.0cm,可裂膜壓力為1100Pa,每槍金粉/DNA用量為1μg/60μg,每皿材料轟擊1次;4)恢復(fù)培養(yǎng)基因槍轟擊后的花藥愈傷組織在上述高滲培養(yǎng)基上繼續(xù)培養(yǎng)8h,然后轉(zhuǎn)移到小麥花藥愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基上恢復(fù)培養(yǎng)6h;5)分化篩選培養(yǎng)恢復(fù)培養(yǎng)6h后的花藥愈傷組織轉(zhuǎn)至分化篩選培養(yǎng)基上進(jìn)行光照分化篩選培養(yǎng);培養(yǎng)溫度為25~28℃,光照度3000lx,每天光照12h;所述的分化篩選培養(yǎng)基選用通用培養(yǎng)基W14,以通用培養(yǎng)基W14為基準(zhǔn),添加以下物質(zhì)6-呋喃基氨基嘌呤(KT)2.0mg/L,α-奈乙酸(NAA)0.1mg/L,酪蛋白500mg/L,生物素0.5mg/L,蔗糖30000mg/L,瓊脂粉5000mg/L;調(diào)整分化篩選培養(yǎng)基的pH值為5.6,置于高壓滅菌鍋(壓力1.0kg/cm2)滅菌20分鐘;經(jīng)基因槍轟擊、恢復(fù)生長的花藥愈傷組織在分化篩選培養(yǎng)基上分化出芽苗。6)壯苗、生根培養(yǎng)待花藥愈傷組織分化的芽苗長至2~3片葉時轉(zhuǎn)移到生根、壯苗培養(yǎng)基上,于25℃、3000Lx光照條件下進(jìn)行壯苗、生根培養(yǎng);所述的壯苗、生根培養(yǎng)基以通用培養(yǎng)基W14為基準(zhǔn),并將W14通用培養(yǎng)的無機(jī)鹽濃度降低一半,添加α-奈乙酸(NAA)0.5mg/L,蔗糖30000mg/L,瓊脂粉5000mg/L;調(diào)整壯苗、生根培養(yǎng)基的pH值為5.6,置于高壓滅菌鍋滅菌20分鐘;7)染色體加倍在壯苗、生根培養(yǎng)基上根、苗生長健壯的花粉植株及時移栽到營養(yǎng)缽中,于15℃、1500Lx光照條件下緩苗,待完全緩苗且進(jìn)一步生長10天后,用含0.05%的秋水仙素和1.5%的二甲基亞砜的染色體加倍液注射分蘗節(jié),對花粉植株進(jìn)行染色體加倍,注射在清晨8~10時進(jìn)行,共3次,每隔一天注射1次,每次用量25μL,花粉植株經(jīng)染色體加倍后得到加倍純合個體;8)分子檢測并篩選用常規(guī)的分子檢測技術(shù)對加倍純合個體進(jìn)行分子檢測,篩選穩(wěn)定的轉(zhuǎn)基因純合株。
全文摘要
本發(fā)明公開了一種小麥花藥愈傷組織基因槍遺傳轉(zhuǎn)化方法,包括如下步驟花藥愈傷組織誘導(dǎo);高滲培養(yǎng);基因槍轟擊轉(zhuǎn)化;恢復(fù)培養(yǎng);分化篩選培養(yǎng);壯苗、生根培養(yǎng);染色體加倍;分子檢測并篩選。與傳統(tǒng)的體細(xì)胞愈傷組織基因搶轉(zhuǎn)化相比,本發(fā)明的基因槍轟擊后的花藥愈傷組織再生頻率高,再生株經(jīng)染色體加倍后可直接獲得轉(zhuǎn)基因純合穩(wěn)定株,克服了傳統(tǒng)的體細(xì)胞愈傷組織基因搶轉(zhuǎn)化中,愈傷組織再生頻率低、轉(zhuǎn)化株基因雜合,須經(jīng)自交2代選擇純合體的技術(shù)弊端,提高了小麥遺傳轉(zhuǎn)化和分子育種效率,轉(zhuǎn)化效率達(dá)8%以上。
文檔編號C12N15/87GK101748152SQ20101010081
公開日2010年6月23日 申請日期2010年1月22日 優(yōu)先權(quán)日2010年1月22日
發(fā)明者任慧莉, 史勇, 崔志剛, 權(quán)軍利, 李春蓮, 白延紅, 陳耀鋒, 陳鑫 申請人:西北農(nóng)林科技大學(xué)