基于soi自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法
【專利摘要】本發(fā)明涉及包蟲蛋白分子檢測技術(shù)領(lǐng)域，是一種基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法，其按下述方法進行：將需要檢測的包蟲蛋白分子待測樣品滴加到SOI基多孔硅上，然后進行干燥，用紫外可見熒光分光光譜儀測其熒光，激發(fā)波長為320nm至450nm，建立線性回歸方程。本發(fā)明將具有無標記特性的SOI技術(shù)引入包蟲蛋白分子檢測的領(lǐng)域，在SOI材料上制備出的SOI基多孔硅用于檢測包蟲蛋白分子，其工藝簡單、成本低廉、可控性強，根據(jù)光譜數(shù)據(jù)的變化可以實現(xiàn)待檢測物的定量檢測工作，檢測流程更簡單，操作方便快捷，檢測時間短，為3小時至4小時，為研發(fā)基于SOI技術(shù)的可定量包蟲病診斷技術(shù)提供了有利條件。
【專利說明】
基于so I自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法
技術(shù)領(lǐng)域
[0001] 本發(fā)明涉及包蟲蛋白分子檢測技術(shù)領(lǐng)域，是一種基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白 分子的快速檢測方法。
【背景技術(shù)】
[0002] 絕緣體上硅(Silicon On InsulAtor，S0I)最初應(yīng)用于微電子領(lǐng)域，它不僅具有良 好的電學(xué)特性，同時還有良好的光學(xué)性能。近年來，基于SOI襯底的光子器件在光學(xué)領(lǐng)域迅 速發(fā)展，基于S0I材料的光子器件已實際應(yīng)用，如波導(dǎo)光柵(Rea I，Marino A，Iodice M, Coppola G,Rendina I，Destefano L.A porous silicon Bragg grating waveguide by direct laser writing.J Phys-Condens Mat 2008;20:3931-3939)、光學(xué)微腔、光開關(guān) (Afonina SM.All-optical switching in photonic crystals based on porous silicon.Plant Soil 1978;49:703-709.)和光子晶體等。在SOI材料上制備出多孔硅光波 導(dǎo)或光子晶體，其工藝簡單、成本低廉、可控性強，可作為高靈敏度的光子生物傳感器，成為 開發(fā)生物傳感器陣列芯片的途徑之一。目前，該材料已開發(fā)出針對DNA進行無標記檢測的芯 片（Kim SK，Cho H，Park HK，Kim JH，Chung BH.Fabrication of nanochannels by anisotropic wet etching on Silicon-on-Insulator wafers and their application to DNA stretch.J Nanosci Nanotecheno 2010；10:637-642.；Zhang H,Jia Z,Lv X,Zhou J，Chen L，Liu R,Ma J.Porous silicon optical microcavity biosensor on silicon-on-insulator wafer for sensitive DNA detection.Biosens Bioelectron 2013；44: 89-94.；Lv X,Zhong F，Jia Z，Chen L，Ma J,Zhang H，Cao Z,Zhou J.Development of silicon-〇n-insulator-based nanoporous si licon photonic crystals for label-free DNA detection.Opt Eng 2013；52)〇
[0003] 包蟲病(Echinococcosis)是棘球絳蟲寄生于人及某些動物等宿主體內(nèi)所致的一 種嚴重的人畜共患性疾病，呈世界性分布。引起人體包蟲病的棘球絳蟲主要有兩種，即多房 棘球絳蟲（Echinococcus multiloculAris，Em)和細粒棘球絳蟲（McManus DP，Zhang W，Li J,Bartley PB.Echinococcosis.Lancet 2003；362:1295-1304.)。據(jù)"十二五"包蟲病五年 防治行動計劃，我國現(xiàn)有50萬包蟲病例，受威脅人口達六千六百萬以上，23個省、自治區(qū)均 有包蟲病例報道，流行區(qū)平均每10萬人口就有患者2900例，僅新疆平均每年手術(shù)治療病例 京尤在 2000 例以上（Jiang C.Today Js regional distribution of echinococcosis in China.Chinese Medical Journal 2002; 115:1244-1247.)。包蟲病患每年造成經(jīng)濟損失達 30億元（Budke CM，Deplazes P，Torgerson PR.Global socioeconomic impact of cystic echinococcosis.Emerg Infect Dis 2006; 12:296-303·)。按WHO以2%人群發(fā)病率為高發(fā) 地區(qū)，西北畜牧業(yè)發(fā)達的省份現(xiàn)有大面積的高發(fā)區(qū)，其中青海、甘肅、寧夏、新疆部分地區(qū)人 群患病率可高達5%至10%，是西部牧民群眾"因病致貧、因病返貧"的原因之一(郭莉，陽愛 國，侯巍.四川省家畜包蟲病防治現(xiàn)狀及防控對策探討.草業(yè)與畜牧2011; 192:52-54王立 英，伍衛(wèi)平，朱雪花.2004-2008年全國包蟲病疫情分析.中國人獸共患病學(xué)報2010; 26:699- 702·)?？乖瑽(Rigan0R，Buttari B，Profumo E，Ortona E，Delunardo F，Margutti P， Mattel V,Teggi A,Sorice M,Siracusano A.Echinococcus granulosus antigen B impairs human dendritic cel 1 differentiation and polarizes immature dendritic cell maturation towards a Th2cel 1 response. Infect Immun 2007；75: 1667-1678·)、Eml8和P38(Gelmedin V，Caballero-Gamiz R,Brehm K.Characterization and inhibition of a P38-1 ike mitogen-activated protein kinase(MAPK)from Echinococcus mu11i1ocu1aris: Antiparasitic activities of P38MAPK inhibitors.Biochem Pharmacol 2008;76:1068-1081.)等蛋白是包蟲中的重要功能蛋白， 定量檢測這些蛋白對于指導(dǎo)包蟲病的臨床治療具有重要意義（Fujimoto Y，Ito A， Ishikawa Y，Inoue Μ , Suzuki Y,Ohhira Μ,Ohtake T , Kohgo Y. Usefulness of recombinant Eml8_ELISA to evaluate efficacy of treatment in patients with alveolar echinococcosis. J Gastroenterol 2005;40:426-431·)。目前在科研方面一般 通過ELISA或免疫印跡的方法，半定量檢測這些蛋白的表達。ELISA和免疫印跡這兩種技術(shù)， 需要專門的儀器設(shè)備，實驗操作較為復(fù)雜，檢測周期較長，一般為1天至2天。

【發(fā)明內(nèi)容】

[0004] 本發(fā)明提供了一種基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法，克服了 上述現(xiàn)有技術(shù)之不足，其能有效解決目前通過ELISA或免疫印跡的方法進行半定量檢測包 蟲蛋白分子的方法存在操作復(fù)雜和檢測周期較長的問題。
[0005] 本發(fā)明的技術(shù)方案是通過以下措施來實現(xiàn)的：一種基于S0I自發(fā)光特性的包蟲蛋 白分子的快速檢測方法，按下述步驟進行:第一步，將需要檢測的包蟲蛋白分子待測樣品滴 加到S0I基多孔硅上，然后將滴加有包蟲蛋白分子待測樣品的S0I基多孔硅干燥至肉眼看不 見水分為止，用紫外可見熒光分光光譜儀測干燥后的滴加有包蟲蛋白分子待測樣品的S0I 基多孔硅的熒光，激發(fā)波長為320nm至450nm;第二步，根據(jù)不同濃度包蟲蛋白分子待測樣品 檢測得到的熒光變量，建立熒光下降程度與包蟲蛋白分子濃度之間的線性回歸方程，進而， 由線性回歸方程可以得知不同熒光下降程度下包蟲蛋白分子的濃度。
[0006]下面是對上述發(fā)明技術(shù)方案的進一步優(yōu)化或/和改進：
[0007] 上述S0I基多孔硅按下述方法得到:將晶向〈100>、電阻率為3Ω · cm至3.5Ω · cm、 厚度為500μπι至550μπι的SOI單晶硅片切成2cmX2cm的正方形，在超聲儀中依次用丙酮、無水 乙醇、去離子水將其徹底清洗l〇min，將清洗好的S0I單晶硅片放到腐蝕槽中，使S0I單晶硅 片浸泡于腐蝕液濃度為HF: C2H50H的體積比為1:3的混合液中，在腐蝕電流強度為35mA/cm2 的條件下進行電化學(xué)腐蝕600s，然后用去離子水反復(fù)沖洗經(jīng)過電化學(xué)腐蝕的SOI單晶硅片 并在氮氣中干燥，最后將其在空氣中氧化72小時后得到S0I基多孔硅。
[0008] 上述S0I單晶硅片為N型S0I單晶硅片，在進行電化學(xué)腐蝕時，在腐蝕槽上方15cm處 放置鹵素?zé)簦庹諒姸葹? ο 〇 1 u X。
[0009] 上述紫外可見熒光分光光譜儀的激發(fā)波長為370nm。
[0010] 上述包蟲蛋白分子為抗原B或Eml8抗原或P38抗原。
[0011]上述將滴加有包蟲蛋白分子待測樣品的S0I基多孔娃在室溫下干燥1小時至3.5小 時即可。
[0012] 本發(fā)明提供了一種基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法，將具有 無標記特性的SOI技術(shù)引入包蟲蛋白分子檢測的領(lǐng)域，在SOI材料上制備出的SOI基多孔硅， 是一種高靈敏度的光子生物傳感器，該SOI基多孔硅可用于檢測包蟲蛋白分子，其工藝簡 單、成本低廉、可控性強，根據(jù)光譜數(shù)據(jù)的變化可以實現(xiàn)待檢測物的定量檢測工作，比免疫 印跡、ELISA等蛋白質(zhì)定量方法相比，檢測流程更簡單，操作方便快捷，檢測時間短，為3小時 至4小時，為研發(fā)基于SOI技術(shù)的可定量包蟲病診斷技術(shù)提供了有利條件。
【附圖說明】
[0013] 圖1為本發(fā)明中SOI基多孔硅加生物前標尺條為500nm SEM的SEM圖。
[0014]圖2為本發(fā)明中S0I基多孔硅加生物前標尺條為lOOnm SEM的SEM圖。
[0015]圖3為本發(fā)明中S0I基多孔硅加生物后標尺條為500nm SEM的SEM圖。
[0016]圖4為本發(fā)明中S0I基多孔硅加生物后標尺條為lOOnm SEM的SEM圖。
[0017] 圖5為本發(fā)明中單晶硅片基底多孔硅與S0I基多孔硅光致發(fā)光對比圖。
[0018] 圖6為本發(fā)明中S0I基多孔硅加生物前后的FTIR圖譜。
[0019]圖7為本發(fā)明中S0I基多孔硅加P38抗原前后的熒光圖譜。
[0020]圖8為本發(fā)明中S0I基多孔硅加NaCl前后的熒光圖譜。
[0021 ]圖9為本發(fā)明中S0I基多孔硅熒光下降量與P38抗原濃度的定量分析圖。
【具體實施方式】
[0022]本發(fā)明不受下述實施例的限制，可根據(jù)本發(fā)明的技術(shù)方案與實際情況來確定具體 的實施方式。
[0023]本發(fā)明中所提到各種化學(xué)試劑和化學(xué)用品如無特殊說明，均為現(xiàn)技術(shù)中公知公用 的化學(xué)試劑和化學(xué)用品;本發(fā)明中的百分數(shù)如沒有特殊說明，均為質(zhì)量百分數(shù);本發(fā)明中的 溶液若沒有特殊說明，均為溶劑為水的水溶液，例如，鹽酸溶液即為鹽酸水溶液。
[0024] 下面結(jié)合實施例對本發(fā)明作進一步描述：
[0025] 實施例1，該基于S0I自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法按下述步驟進 行:第一步，將需要檢測的包蟲蛋白分子待測樣品滴加到S0I基多孔硅上，然后將滴加有包 蟲蛋白分子待測樣品的S0I基多孔硅干燥至肉眼看不見水分為止，用紫外可見熒光分光光 譜儀測干燥后的滴加有包蟲蛋白分子待測樣品的S0I基多孔硅的熒光，激發(fā)波長為320nm至 450nm;第二步，根據(jù)不同濃度包蟲蛋白分子待測樣品檢測得到的熒光變量，建立熒光下降 程度與包蟲蛋白分子濃度之間的線性回歸方程，進而，由線性回歸方程可以得知不同熒光 下降程度下包蟲蛋白分子的濃度。
[0026] 實施例2，作為實施例1的優(yōu)化，S0I基多孔硅按下述方法得到:將晶向〈100>、電阻 率為3Ω .cm至3.5Ω .cm、厚度為500μηι至550μηι的S0I單晶娃片切成2cmX2cm的正方形，在 超聲儀中依次用丙酮、無水乙醇、去離子水將其徹底清洗l〇min，將清洗好的S0I單晶硅片放 到腐蝕槽中，使S0I單晶硅片浸泡于腐蝕液濃度為HF:C2H50H的體積比為1:3的混合液中，在 腐蝕電流強度為35mA/cm2的條件下進行電化學(xué)腐蝕600s，然后用去離子水反復(fù)沖洗經(jīng)過電 化學(xué)腐蝕的S0I單晶硅片并在氮氣中干燥，最后將其在空氣中氧化72小時后得到S0I基多孔 娃。
[0027] 實施例3,作為實施例2的優(yōu)化，SOI單晶硅片為N型SOI單晶硅片，在進行電化學(xué)腐 蝕時，在腐蝕槽上方15cm處放置鹵素?zé)?，光照強度為lOOlux。
[0028] 實施例4,作為上述實施例的優(yōu)化，紫外可見熒光分光光譜儀的激發(fā)波長為370nm。
[0029] 實施例5,作為上述實施例的優(yōu)化，包蟲蛋白分子為抗原B或Eml8抗原或P38抗原。 [0030]實施例6,作為上述實施例的優(yōu)化，將滴加有包蟲蛋白分子待測樣品的SOI基多孔 硅在室溫下干燥1小時至3.5小時即可。
[0031]本發(fā)明中的包蟲蛋白分子待測樣品為純化的包蟲蛋白分子，可以為純化的抗原B 蛋白分子或純化的Eml8抗原蛋白分子或純化的P38抗原蛋白分子。
[0032]本發(fā)明提供了一種基于S0I自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法，將具有 無標記特性的S0I技術(shù)引入包蟲蛋白分子檢測的領(lǐng)域，在S0I材料上制備出的S0I基多孔硅， 是一種高靈敏度的光子生物傳感器，該S0I基多孔硅可用于檢測包蟲蛋白分子，其工藝簡 單、成本低廉、可控性強，根據(jù)光譜數(shù)據(jù)的變化可以實現(xiàn)待檢測物的定量檢測工作，比免疫 印跡、ELISA等蛋白質(zhì)定量方法相比，檢測流程更簡單，操作方便快捷，檢測時間短，為3小時 至4小時，為研發(fā)基于S0I技術(shù)的可定量包蟲病診斷技術(shù)提供了有利條件。
[0033]將包蟲蛋白分子滴加到在S0I材料上通過電化學(xué)腐蝕制備出的可發(fā)光的S0I基多 孔硅上，發(fā)現(xiàn)滴加包蟲蛋白分子后，S0I基多孔硅的熒光強度會下降，而S0I基多孔硅的的熒 光下降程度與蛋白濃度之間的關(guān)系是隨著蛋白濃度的逐漸增大，S0I基多孔硅的熒光下降 程度也在增加。
[0034] 具體分析過程：
[0035] 一、實驗步驟
[0036] N型S0I單晶硅片（晶向〈100>，電阻率3Ω · cm至3.5Ω · cm，厚度525±25μπι)，將N 型S0I單晶硅片切成2cmX 2cm的正方形，在超聲儀中依次用丙酮、乙醇、去離子水將其徹底 清洗1 〇min，把清洗好的N型S0I單晶硅片放到腐蝕槽中，并在腐蝕槽上方15cm處放置鹵素 燈，光照強度為lOOlux，N型S0I單晶硅片浸泡于腐蝕液濃度為HF: C2H50H= 1:3 (體積比）的 混合液中，腐蝕電流強度為35mA/cm2，腐蝕時間為600s，進行電化學(xué)腐蝕，結(jié)束后用去離子 水反復(fù)沖洗并在氮氣中干燥，最后將其在空氣中氧化72小時得到S0I基多孔硅。
[0037] 氧化完成之后，取六片多孔硅，并分別用紫外可見熒光分光光譜儀測所有S0I基多 孔硅的焚光，激發(fā)波長為370nm，配制六種不同濃度的包蟲P38蛋白分子待測樣品，濃度分別 為2 X10_3mg/mL、2 X10_4mg/mL、2 X10_5mg/mL、2 X10_6mg/mL、2 X10_7mg/mL、2 X10_8mg/ mL;取每種濃度10yg，分別滴到六片SOI基多孔硅上，在室溫條件下自然干燥3.5小時，再用 紫外可見熒光分光光譜儀測滴有包蟲P38蛋白分子待測樣品的S0I基多孔硅，激發(fā)波長 370nm，并將滴加包蟲P38蛋白分子待測樣品前后的S0I基多孔硅的熒光迀移進行對比分析。 [0038] 二、結(jié)果與討論
[0039]電鏡特征分析:如圖1和圖2所示，給出了N型大電阻率S0I硅片制備的S0I基多孔硅 的正面形貌，可以看到S0I基多孔硅表面的平均孔徑約為500nm左右，各類分子可以充分的 進入。
[0040] 如圖3和圖4所示，給出了加入包蟲抗原后S0I基多孔硅的正面形貌，我們看到S0I 基多孔硅孔洞很多被抗原分子所填充，與單晶硅片上制備多孔硅類似，通過不同分辨率照 片的對比分析，我們可以明顯的發(fā)現(xiàn)對于包蟲分子這種大分子進入，S0I基多孔硅的孔洞 (至少是表面)大部分被填充，SOI基多孔硅復(fù)雜的孔隙結(jié)構(gòu)對于大分子有很好的包嵌作用。 [0041] SOI基多孔硅熒光特性分析:如圖5所示，圖5是單晶硅片基底多孔硅與SOI基多孔 硅光致發(fā)光對比圖，可以看到相同的實驗條件和光致發(fā)光入射激發(fā)光下，SOI基多孔硅發(fā)光 中心發(fā)生了明顯的紅移，可以推測其納米硅單元內(nèi)部有較大的不同，這與電化學(xué)腐蝕制備 SOI基多孔硅時陰、陽兩極均在表面有關(guān)。
[0042] FTIR特性分析:為了確認是否能夠?qū)x蛋白分子較好的包嵌到到SOI基多孔硅 中，實驗采用傅里葉變換紅外光譜儀觀測了樣品的紅外吸收光譜，如圖6所示?？梢钥吹剑?入包蟲蛋白分子之前，769cm-l附近出現(xiàn)了明顯的Si-H鍵特征峰，加入抗原之后在3000cm-l 處出現(xiàn)了-NH鍵特征峰，表明包蟲蛋白分子充分嵌入到了 SOI基多孔硅的孔洞之中。
[0043] 包蟲病P38蛋白分子快速檢測實驗與分析：圖7是多孔硅浸泡2X10-4mg/mL包蟲 P38蛋白分子待測樣品前后的熒光對比示意圖，與APTES類似，包蟲P38蛋白進入至IjSOI基多 孔硅后，會導(dǎo)致S0I基多孔硅的光致發(fā)光的部分淬滅，從圖7中可以看到，浸泡2 X 10-4mg/mL 包蟲抗原包蟲P38蛋白分子待測樣品后，SOI基多孔硅的熒光強度下降了近400個單位。
[0044] 對照實驗分析：圖8是滴加NaCl溶液的對照實驗光譜圖，圖中我們可以看到，滴加 過NaCl溶液的S0I基多孔硅前后的熒光圖譜下降不多，檢測實驗中熒光光譜發(fā)生了紅移，說 明滴加NaCl溶液對S0I基多孔硅發(fā)光中心的偏移也具有一定的影響，但是熒光強度幾無改 變，因為NaCl為小分子，說明S0I基多孔硅對類似于NaCl等小分子的包嵌效果一般，結(jié)合圖7 可知，S0I基多孔硅對類似于包蟲P38蛋白分子等大分子的包嵌效果較好，包嵌效果好，檢測 結(jié)果也更為準確。
[0045] 結(jié)果的定量分析：圖9反映了不同包蟲抗原濃度對應(yīng)S0I基多孔硅的熒光下降程 度，即多孔硅的熒光下降程度與抗原濃度之間的關(guān)系，從圖9中可以看到，隨著抗原濃度的 逐漸增大，S0I基多孔硅的熒光下降程度也在增加，圖中實驗每個點基于3次同樣實驗的平 均值，可以看到呈近似線性關(guān)系，建立線性方程，便能根據(jù)熒光下降量得知包蟲蛋白分子待 測樣品，同APTES實驗類似，這也和S0I基多孔硅熒光機理的復(fù)雜性有關(guān)。
[0046] 本發(fā)明所用的實驗材料如表1所示，本發(fā)明所用的實驗材料如表2所示。
[0047] 表1、實驗材料
[0048]
[0049] 表2、實驗儀器
[0051]以上技術(shù)特征構(gòu)成了本發(fā)明的實施例，其具有較強的適應(yīng)性和實施效果，可根據(jù) 實際需要增減非必要的技術(shù)特征，來滿足不同情況的需求。
【主權(quán)項】
1. 一種基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法，其特征在于按下述步驟 進行：第一步，將需要檢測的包蟲蛋白分子待測樣品滴加到SOI基多孔硅上，然后將滴加有 包蟲蛋白分子待測樣品的SOI基多孔硅干燥至肉眼看不見水分為止，用紫外可見熒光分光 光譜儀測干燥后的滴加有包蟲蛋白分子待測樣品的SOI基多孔硅的熒光，激發(fā)波長為320nm 至450nm;第二步，根據(jù)不同濃度包蟲蛋白分子待測樣品檢測得到的熒光變量，建立熒光下 降程度與包蟲蛋白分子濃度之間的線性回歸方程，進而，由線性回歸方程可以得知不同熒 光下降程度下包蟲蛋白分子的濃度。2. 根據(jù)權(quán)利要求1所述的基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法，其特征 在于SOI基多孔硅按下述方法得到：將晶向〈100>、電阻率為3Ω ·_至3.5Ω ·_、厚度為 500μηι至550μηι的SOI單晶娃片切成2cmX2cm的正方形，在超聲儀中依次用丙酮、無水乙醇、 去離子水將其徹底清洗1 Omin，將清洗好的SOI單晶硅片放到腐蝕槽中，使SOI單晶硅片浸泡 于腐蝕液濃度為HF: C2H5OH的體積比為1:3的混合液中，在腐蝕電流強度為35mA/cm2的條件 下進行電化學(xué)腐蝕600s，然后用去離子水反復(fù)沖洗經(jīng)過電化學(xué)腐蝕的SOI單晶硅片并在氮 氣中干燥，最后將其在空氣中氧化72小時后得到SOI基多孔硅。3. 根據(jù)權(quán)利要求2所述的基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法，其特征 在于SOI單晶硅片為N型SOI單晶硅片，在進行電化學(xué)腐蝕時，在腐蝕槽上方15cm處放置鹵素 燈，光照強度為lOOlux。4. 根據(jù)權(quán)利要求1或2或3所述的基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法， 其特征在于紫外可見熒光分光光譜儀的激發(fā)波長為370nm。5. 根據(jù)權(quán)利要求1或2或3所述的基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法， 其特征在于包蟲蛋白分子為抗原B或Eml8抗原或P38抗原。6. 根據(jù)權(quán)利要求4所述的基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法，其特征 在于包蟲蛋白分子為抗原B或Eml8抗原或P38抗原。7. 根據(jù)權(quán)利要求1或2或3所述的基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法， 其特征在于將滴加有包蟲蛋白分子待測樣品的SOI基多孔硅在室溫下干燥1小時至3.5小時 即可。8. 根據(jù)權(quán)利要求4所述的基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法，其特征 在于將滴加有包蟲蛋白分子待測樣品的SOI基多孔硅在室溫下干燥1小時至3.5小時即可。9. 根據(jù)權(quán)利要求5所述的基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法，其特征 在于將滴加有包蟲蛋白分子待測樣品的SOI基多孔硅在室溫下干燥1小時至3.5小時即可。10. 根據(jù)權(quán)利要求6所述的基于SOI自發(fā)光特性的包蟲蛋白分子的快速檢測方法，其特 征在于將滴加有包蟲蛋白分子待測樣品的SOI基多孔硅在室溫下干燥1小時至3.5小時即 可。
【文檔編號】G01N21/64GK106092988SQ201610405785
【公開日】2016年11月9日
【申請日】2016年6月8日
【發(fā)明人】溫浩, 呂國棟, 呂小毅, 莫家慶, 林仁勇, 盧曉梅, 劉輝
【申請人】新疆醫(yī)科大學(xué)第附屬醫(yī)院, 新疆醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院