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一種節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒的分離與純化方法

文檔序號:564485閱讀:214來源:國知局
專利名稱:一種節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒的分離與純化方法
技術領域
本發(fā)明屬于節(jié)旋藍細菌分離與純化的技術 背景技術節(jié)旋藍細菌Urt/wMp('raqya"oto戰(zhàn)n'a)是一種由多個細胞串連成絲狀不分枝、呈規(guī)則螺線 形、光合放氧、古老的原核微生物,不僅是開展物種起源與演化、形態(tài)建成、光合作用、抗 逆機制等重大生物學課題研究的理想材料,而且因其生長快、培殖設施簡便、生產(chǎn)成本低、 食用安全、富含蛋白質(zhì)和多糖等多種營養(yǎng)與生物活性物質(zhì)而在全球得以大規(guī)模開發(fā)利用。與 生理生化、培殖生產(chǎn)技術、營養(yǎng)保健、藥理學等相比,有關節(jié)旋藍細菌的分子遺傳學方面的 研究相對不足,嚴重影響著當前節(jié)旋藍細菌的深入研究與開發(fā)利用。DNA是生物的遺傳物質(zhì),研究并揭示DNA的遺傳信息,以及結(jié)構(gòu)與功能關系等對全面推進節(jié)旋藍細菌的基礎研究與 開發(fā)應用具有重要意義。與其它生物一樣,節(jié)旋藍細菌中除有基因組DNA外,還有一些被稱 作質(zhì)粒的小分子DNA,它們呈環(huán)狀或線狀,不僅擔負著重要的生物學功能,而且也是構(gòu)建轉(zhuǎn) 基因載體的理想元件。建立質(zhì)粒高效、高質(zhì)量的分離與純化方法,是開展其序列、結(jié)構(gòu)、功能、轉(zhuǎn)基因載體構(gòu) 建等后續(xù)研發(fā)的基礎。秦松等(海洋與湖沼,1994, 25(5): 560-563)、 Lee等(Plant Sci, 1995, 106: 99~105)、 Kojima等(Chin J Oceanol Limnol, 1998, 16: 30~39)對藍細菌中質(zhì)粒的分 離純化及特性等作了一些研究,但由于節(jié)旋藍細菌的蛋白質(zhì)和多糖含量高,用SDS法或CTAB 法等常規(guī)提取方法均難以獲得高質(zhì)量的質(zhì)粒,國內(nèi)外尚未見有關解決這一難題的報道。發(fā)明內(nèi)容本發(fā)明目的是針對現(xiàn)有技術的問題建立一種簡便、高效分離與純化高質(zhì)量節(jié)旋藍細菌質(zhì) 粒的方法。本發(fā)明是在CTAB提取液和第一次沉淀后的DNA溶解液即TE緩沖液中加入適量的蛋白 酶K;進而利用凝膠凍融-高速離心法,對質(zhì)粒作進一步的高效富集與純化,以此獲得高質(zhì)量、 結(jié)構(gòu)完整的節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒。我們利用常規(guī)的CTAB法和SDS法分別提取節(jié)旋藍細菌品系Ap-2mz的總DNA并經(jīng)電 泳分析發(fā)現(xiàn),用兩種方法都能提得清晰的基因組DNA,但用SDS法提不到質(zhì)粒,而用CTAB 法只能提到隱約可見、模糊的質(zhì)粒,也不能滿足進一步研究所需(圖l)。在此基礎上,我們 將CTAB法與酶法有機結(jié)合,首次建立了節(jié)旋藍細菌DNA提取的CTAB-蛋白酶K法,在電泳圖上不僅能看到清晰的基因組DNA,而且還有一條清晰、分子量約0.75kb的質(zhì)粒帶(圖1)。 通過VersaDoc Imaging System 3000凝膠成像系統(tǒng)(Bio-Rad, USA)的Quantity One軟件分 析表明,在節(jié)旋藍細菌裂解液CTAB及第一次沉淀后的DNA溶解液中加入適量的蛋白酶K, 可將質(zhì)粒的提取率提高近3倍,從而電泳條帶清晰、能滿足后續(xù)研究現(xiàn)需。同時,為滿足節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒的測序、結(jié)構(gòu)與功能等后續(xù)研究需要,有必要對其作進一 步富集與純化。我們試用了一些常用的純化與回收試劑盒,但純度和回收率等均不理想。經(jīng) 反復試驗與改進,我們建立了一種將凝膠凍融與高速離心等技術相結(jié)合的方法,即凝膠凍融-高速離心純化法。用此法純化的質(zhì)粒(圖1),電泳條帶的單一,說明純度高;形狀與位置 不發(fā)生變化,說明分子結(jié)構(gòu)完整;用凝膠成像系統(tǒng)對純化前后質(zhì)粒電泳條帶作檢測分析表明, 回收效率高達90%以上。本發(fā)明的顯著優(yōu)點本發(fā)明所建立的節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒分離與純化方法與常規(guī)方法相比,具有操作簡便、得率 高、質(zhì)量好、結(jié)構(gòu)完整等特點。


圖1為利用不同提取方法提得節(jié)旋藍細菌品系Ap-2mz總DNA的電泳圖,其中M為標 準分子量1表示CTAB-蛋白酶K法;2表示CTAB法;3表示SDS法;圖2為從節(jié)旋藍細菌品系Ap-2mz中純化的質(zhì)粒的電泳圖;其中M為標準分子量l表 示純化的質(zhì)粒;圖3為利用CTAB-蛋白酶K法從被試節(jié)旋藍細菌品系Ap-JS10m中提取的總DNA和純 化的質(zhì)粒的電泳圖,其中M為標準分子量1表示總DNA; 2表示純化的質(zhì)粒。
具體實施方式
本發(fā)明的詳細技術方案可以通過以下步驟實施1、 選用材料為公知的節(jié)旋藍細菌品系Ap-2mz、 Ap-JS10m (浙江大學原子核農(nóng)業(yè)科學 研究所生物資源與分子工程實驗室也有保存)。2、 試劑和儀器瓊脂糖、CTAB (十六烷基三甲基溴化銨)、SDS (十二垸基磺酸鈉)、微孔離心柱 (SK131/132柱)為上海生工生物工程公司產(chǎn)品;蛋白酶K為Merck公司產(chǎn)品;RNaseA均 為日本TaKaRa公司產(chǎn)品;其它試劑均為分析純。凝膠電泳分析系統(tǒng)為美國Amersham公司 產(chǎn)品;凝膠成像分析系統(tǒng)為美國Bio-Rad公司產(chǎn)品。3、 節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒的分離提取(1)取約250 mg新鮮藻泥或冰凍保存的藻泥(或冰凍保存的干燥藻粉約15 mg)于滅 菌的5ml離心管中,先用液氮對樣品凍融處理3 5次后,加入2ml預熱至65'C的CTAB提取液[2。/oCTAB, 50 mmol/L Tris-HCl (pH8.0) , 10 mmol/L EDTA, 0.7 mol/L NaCl, 1% (V/V) i8-巰基乙醇(使用前加入)],并加入適量的蛋白酶K溶液至終濃度300 ng/ml;再將樣 品顛倒混合均勻,于62'C水浴lh,期間每隔10min左右將樣品輕輕搖勻一次。(2) 室溫下10,000 rpm離心5 min除去細胞碎片等雜質(zhì),上清液加入等體積氯仿/異戊 醇(24 : 1),輕輕反復顛倒混勻后于12,000 rpm離心10min。(3) 取上清液于另一滅菌離心管中,加入3倍體積的-2(TC預冷無水乙醇及1/10體積的 3mol/LNaAc (pH4.8),輕輕顛倒數(shù)次后于-20。C下放置1 h,使DNA充分沉淀。(4) 12,000 rpm離心10 min。第一次沉淀后DNA用70%的乙醇洗漆,真空抽干,溶于 500 ^ TE-蛋白酶K緩沖液(10 mmol/L Tris-HCl, 1 mmol/L EDTA,加入蛋白酶K至終濃度 200pg/ml, pH 8.0),于50'C水浴1 h并不時輕輕搖動,直至溶液澄清。(5) 加入等體積的酚/氯仿/異戊醇(25 : 24 : 1),輕輕顛倒混勻,12,000 rpm離心10min。(6) 取上清液,加入1/10體積的3 mol/LNaAc和3倍體積-20。C預冷的無水乙醇,于-20 。C放置1 h。(7) 12,000 rpm 4。C離心10 min,第二次沉淀后DNA用70%的乙醇洗滌2次,真空抽 干,加入100plTE-RNase緩沖液(10腿ol/LTris-HCl, lmmol/LEDTA, 50 ng/ml RNase, pH8.0),在37。C水浴中保溫30min,使DNA溶解。4、 電泳分析和觀察將提得的DNA在1%的瓊脂糖凝膠上電泳,電壓4 V/cm。爾后用EB染色約30 min,再 在VersaDoc Imaging System 3000凝膠成像分析系統(tǒng)(Bio-Rad, USA)觀察并照相。5、 節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒的純化法(1) 在紫外燈長波段割下質(zhì)粒所在的瓊脂糖凝膠塊,放入滅菌離心管中,約加膠塊體積 1倍的TE緩沖液,-20。C冷凍60 min。(2) 取出冷凍的離心管,待膠融化后,將膠與溶液一起轉(zhuǎn)移至鋪有一層滅菌脫脂棉(或 玻璃棉)的微孔離心柱中,13,000rpm離心15min,質(zhì)粒即在離心管中收集到的溶液中。(3) 在回收液中加入等體積酚/氯仿/異戊醇,混勻后于室溫下12,000 rpm離心5 min。(4) 取上清,加入0.1倍體積3 mol/LNaAc及2.5倍體積預冷無水乙醇,-201:放置30 min, 12,000 rpm離心10 min,沉淀用70%的乙醇洗滌2次,真空抽干,加入20 ul雙蒸水溶 解,于-2(TC保存。(5) 電泳分析和觀察。方法同4中所述。結(jié)果與分析研究發(fā)現(xiàn),常規(guī)的CTAB法和SDS法雖然可提得清晰的節(jié)旋藍細菌的基因組DNA,但 都不能提得高質(zhì)量的質(zhì)粒(圖1)。我們根據(jù)CTAB法略優(yōu)于SDS法,并將其與酶法相結(jié)合, 首次建立了節(jié)旋藍細菌DNA提取的CTAB-蛋白酶K法,即在節(jié)旋藍細菌裂解液CTAB及第 一次沉淀后的DNA溶解液中加入適量的蛋白酶K,則可在提得高質(zhì)量基因組DNA的同時, 獲得高質(zhì)量的質(zhì)粒(圖l)。該方法的關鍵要點在于利用蛋白酶K酶解節(jié)旋藍細菌中大量的 蛋白質(zhì),從而使DNA與蛋白質(zhì)解離并被分離。同時,我們所建立節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒的凝膠凍 融-高速離心純化法,所得質(zhì)粒的純度與回收率高、結(jié)構(gòu)完整(圖2)。作為實例,我們選取了節(jié)旋藍細菌品系Ap-JS10m來驗證本發(fā)明的實用性。利用CTAB-蛋白酶K法提取其總DNA并作電泳分析,如附圖3所示,利用所建方法可提得清晰、高質(zhì) 量的基因組DNA和一條分子量約為1300 bp的質(zhì)粒。進一步用所建的凝膠凍融-高速離心純 化法,得到了條帶單一、清晰的質(zhì)粒。此外,從研究結(jié)果可知,不同品系間節(jié)旋藍細菌的質(zhì) 粒不盡相同,這也體現(xiàn)了其生物多樣性及研究的必要性。
權(quán)利要求
1、一種節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒的分離與純化方法,其特征是在CTAB提取液和第一次沉淀后的DNA溶解液即TE緩沖液中加入適量的蛋白酶K;進而利用凝膠凍融-高速離心法,對質(zhì)粒作進一步的高效富集與純化,以此獲得高質(zhì)量、結(jié)構(gòu)完整的節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒。
2、 按權(quán)利要求1所述節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒的分離與純化方法,其特征是采用下列操作步驟(1) 選用材料為公知的節(jié)旋藍細菌品系Ap-2mz、 Ap-JS10m;(2) 試劑和儀器瓊脂糖、CTAB即十六垸基三甲基溴化銨、SDS即十二垸基磺酸鈉、微孔 離心柱即SK131/132柱為上海生工生物工程公司產(chǎn)品,蛋白酶K為Merck公司產(chǎn)品,RNase A均為日本TaKaRa公司產(chǎn)品,其它試劑均為分析純,凝膠電泳分析系統(tǒng)為美國Amersham 公司產(chǎn)品,凝膠成像分析系統(tǒng)為美國Bio-Rad公司產(chǎn)品;(3) 節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒的分離提取取約250 mg新鮮藻泥或冰凍保存的藻泥或冰凍保存的干燥藻粉約15 mg于滅菌的5 ml 離心管中,先用液氮對樣品凍融處理3 5次后,加入2ml預熱至65'C的CTAB提取液包括 2%CTAB, pH8.0的50mmol/LTris-HCl, 10 mmol/L EDTA, 0.7 mol/LNaCl, 1% (V/V)》 -巰基乙醇于使用前加入,并加入適量的蛋白酶K溶液至終濃度300 pg/ml,再將樣品顛倒混 合均勻,于62。C水浴1 h,期間每隔10 min左右將樣品輕輕搖勻一次;室溫下10,000 rpm離 心5min除去細胞碎片等雜質(zhì),上清液加入等體積氯仿/異戊醇(24 : 1),輕輕反復顛倒混勻 后于12,000 rpm離心10 min;取上清液于另一滅菌離心管中,加入3倍體積的-2(TC預冷無水 乙醇及1/10體積的pH 4.8的3 mol/LNaAc輕輕顛倒數(shù)次后于-2(TC下放置1 h,使DNA充分 沉淀;12,000 rpm離心10 min。第一次沉淀后DNA用70%的乙醇洗滌,真空抽干,溶于500 Hl TE-蛋白酶K緩沖液即10 mmol/L Tris-HCl, 1 mmol/L EDTA,加入蛋白酶K至終濃度200 pg/ml, pH8.0,于50'C水浴1 h并不時輕輕搖動,直至溶液澄清;加入等體積的酚/氯仿/異 戊醇25 : 24 : 1,輕輕顛倒混勻,12,000 rpm離心10min;取上清液,加入1/10體積的3 mol/L NaAc和3倍體積-20。C預冷的無水乙醇,于-20。C放置1 h; 12,000 rpm4。C離心10 min,第二 次沉淀后DNA用70%的乙醇洗滌2次,真空抽干,加入100 pl TE-RNase緩沖液即10 mmol/L Tris-HCl, lmmol/LEDTA, 50嗎/ml RNase, pH 8.0,在37。C水浴中保溫30 min,使DNA 溶解;(4) 電泳分析和觀察將提得的DNA在1%的瓊脂糖凝膠上電泳,電壓4V/cm。爾后用EB染色約30 min,再在VersaDoc Imaging System 3000凝膠成像分析系統(tǒng)(Bio-Rad, USA)觀察并照相; (5)利用凝膠凍融-高速離心法純化節(jié)旋藍細菌的質(zhì)粒在紫外燈長波段割下質(zhì)粒所在的瓊脂糖凝膠塊,放入滅菌離心管中,約加膠塊體積l倍 的TE緩沖液,-20^冷凍601!1;取出冷凍的離心管,待膠融化后,將膠與溶液一起轉(zhuǎn)移至 鋪有一層滅菌脫脂棉或玻璃棉的微孔離心柱中,13,000 rpm離心15 min,質(zhì)粒即在離心管中 收集到的溶液中;在回收液中加入等體積酚/氯仿/異戊醇,混勻后于室溫下12,000 rpm離心5 min;取上清,加入0.1倍體積3 mol/L NaAc及2.5倍體積預冷無水乙醇,-20°。放置30 min, 12,000rpm離心lOmin,沉淀用70%的乙醇洗滌2次,真空抽干,加入20 ul雙蒸水溶解, 于-2(TC保存;按(4)所述方法進行電泳分析和觀察。
全文摘要
一種分離與純化節(jié)旋藍細菌質(zhì)粒的方法。常規(guī)的CTAB法或SDS法雖均能提取出清晰的基因組DNA,但用SDS法提不到質(zhì)粒,用CTAB法也只能提到隱約可見、模糊的質(zhì)粒,不能滿足研究需要。本發(fā)明的CTAB-蛋白酶K法,即在CTAB提取液及第一次沉淀后的DNA溶解液中加入適量的蛋白酶K,不僅能提得清晰的基因組DNA,而且還能得到清晰的質(zhì)粒;進一步用本發(fā)明的凝膠凍融-高速離心純化法,即將質(zhì)粒所在的凝膠帶切入滅菌離心管中,加入約與膠塊等體積的TE緩沖液并于-20℃冷凍60min后取出并融化,轉(zhuǎn)至鋪有滅菌脫脂棉或玻璃棉的微孔離心柱中13,000rpm離心15min,質(zhì)粒即在離心管底部的溶液中,能得到高質(zhì)量、完整的質(zhì)粒。
文檔編號C12N15/10GK101215559SQ20081005908
公開日2008年7月9日 申請日期2008年1月9日 優(yōu)先權(quán)日2008年1月9日
發(fā)明者徐步進, 曹學成, 楊靈勇, 汪志平, 潘劍用 申請人:浙江大學
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